原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞凋亡的保护作用

原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞凋亡的保护作用

论文摘要

本研究选用与多巴胺能神经元有许多相似特征的PC12细胞为实验对象,利用鱼藤酮诱导细胞凋亡,从而建立帕金森(PD)体外细胞模型。结果表明,应用鱼藤酮48小时后,细胞活力下降,细胞中的乳酸脱氢酶(LDH)漏出率增加;通过细胞核的形态观察以及流式细胞仪的分析,鱼藤酮使凋亡细胞比例显著增加,并且使Bcl-2蛋白表达量减少,Bax蛋白表达量升高,Bcl-2/Bax蛋白比率下降,符合线粒体凋亡通路的特征。在室温下,利用我们先前的分离提取工艺,从益智仁里的乙酸乙酯萃取相中得到一个活性单体化合物原儿茶酸(PCA),并探讨PCA在PC12细胞中的保护作用机制。LDH分析证明了PCA能够保护质膜的完整性而抑制鱼藤酮介导的LDH漏出;通过形态观察及流式细胞仪的分析,证实PCA可显著抑制细胞凋亡;另外,AnnexinV-PI双染的方法定量分析,发现PCA能够明显降低细胞凋亡/坏死细胞的比率。PCA是通过提高Bcl-2蛋白表达和线粒体膜电位(MMP),促进超氧化物歧化酶(SOD)和过氧化氢酶(CAT)的激活,抑制活性氧(ROS)的产生和谷胱甘肽(GSH)的耗竭,拮抗半胱氨酸酶-3(caspase-3)的活性,达到抑制鱼藤酮介导的细胞凋亡的目的。这些结果表明:PCA可能是通过削弱线粒体功能失调而抑制其所致的细胞凋亡。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 1.绪论
  • 1.1 研究背景
  • 1.2 选题依据
  • 1.3 实验方案
  • 1.4 研究目的及意义
  • 参考文献
  • 2.文献综述
  • 2.1 细胞凋亡的信号通路
  • 2.1.1 死亡受体通路
  • 2.1.2 线粒体通路
  • 2.1.3 内质网通路
  • 2.2 线粒体功能异常与细胞凋亡
  • 2.2.1 线粒体介导的凋亡通路
  • 2.2.2 线粒体复合物Ⅰ的抑制与细胞凋亡
  • 2.3 氧化应激,细胞凋亡与帕金森病
  • 2.3.1 氧化应激与细胞凋亡
  • 2.3.2 氧化应激与帕金森病
  • 2.4 帕金森病模型的研究进展
  • 2.4.1 外源性神经毒素诱导的细胞及动物帕金森病模型
  • 2.4.2 帕金森病遗传及免疫损伤模型
  • 2.5 中药益智仁及其有效成分原儿茶酸的研究进展
  • 2.5.1 益智仁的化学成分
  • 2.5.2 益智仁的药理作用
  • 2.5.3 原儿茶酸的研究概况
  • 参考文献
  • 3 鱼藤酮诱导的PC12细胞凋亡模型的建立
  • 3.1 实验材料与设备
  • 3.1.1 实验材料
  • 3.1.2 实验设备
  • 3.2 实验方法
  • 3.2.1 PC12细胞的培养及药物处理
  • 3.2.2 鱼藤酮对PC12细胞的损伤
  • 3.2.3 胞内乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase,LDH)的检测
  • 3.2.4 Hoechst 33258染色对PC12细胞形态学观察
  • 3.2.5 流式细胞仪分析PC12细胞DNA含量
  • 3.2.6 AnnexinV-PI双染检测PC12细胞凋亡与坏死
  • 3.2.7 流式细胞仪分析Bcl-2家族蛋白
  • 3.2.8 统计学处理
  • 3.3 实验结果
  • 3.3.1 鱼藤酮引起的PC12细胞损伤的时间和剂量关系
  • 3.3.2 鱼藤酮引起乳酸脱氢酶(LDH)的释放
  • 3.3.3 Hoechst 33258染色法观察细胞凋亡
  • 3.3.4 流式细胞仪分析PC12细胞DNA的含量
  • 3.3.5 流式细胞仪检测AV-PI双染的细胞凋亡与坏死
  • 3.3.6 鱼藤酮对Bcl-2家族蛋白的影响
  • 3.4 讨论
  • 3.5 小结
  • 参考文献
  • 4 原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞凋亡的保护作用机制的研究
  • 4.1 实验材料与设备
  • 4.1.1 实验材料
  • 4.1.2 实验设备
  • 4.2 实验方法
  • 4.2.1 实验药物的制备
  • 4.2.2 PC12细胞的培养
  • 4.2.3 原儿茶酸对PC12细胞的增殖作用
  • 4.2.4 原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞损伤的作用
  • 4.2.5 胞内乳酸脱氢酶(LDH)的测定
  • 4.2.6 Hoechst 33258染色对PC12的细胞形态学观察
  • 4.2.7 流式细胞仪分析PC12细胞的DNA含量
  • 4.2.8 AnnexinV-PI双染检测PC12细胞凋亡与坏死
  • 4.2.9 流式细胞仪分析PC12细胞Bcl-2家族蛋白
  • 4.2.10 胞内谷胱甘肽(GSH)含量的测定
  • 4.2.11 胞内抗氧化酶(SOD,GSH-Px,CAT)的检测
  • 4.2.12 胞内活性氧(ROS)的检测
  • 4.2.13 Caspase-3活性分析
  • 4.2.14 线粒体膜电位(MMP)的检测
  • 4.2.15 蛋白质含量的测定
  • 4.2.16 统计学处理
  • 4.3 实验结果
  • 4.3.1 原儿茶酸对PC12细胞增殖作用的影响
  • 4.3.2 原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞活力的影响
  • 4.3.3 原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞的LDH漏出的影响
  • 4.3.4 原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞凋亡的保护作用
  • 4.3.5 原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞中Bcl-2家族蛋白表达的影响
  • 4.3.6 原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞中GSH含量变化的影响
  • 4.3.7 原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞中抗氧化酶活性变化的影响
  • 4.3.8 原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞中ROS产生的影响
  • 4.3.9 原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞中Caspase-3活性变化的影响
  • 4.3.10 原儿茶酸对鱼藤酮诱导的PC12细胞中MMP变化的影响
  • 4.4 讨论
  • 4.5 小结
  • 参考文献
  • 5 结论与展望
  • 5.1 结论
  • 5.2 展望
  • 英文缩略语
  • 攻读硕士学位期间发表学术论文情况
  • 致谢
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