ClC-3氯离子通道在视网膜神经节细胞RGC-5凋亡中的作用研究

ClC-3氯离子通道在视网膜神经节细胞RGC-5凋亡中的作用研究

论文摘要

视网膜神经节细胞(retinal ganglion cells, RGCs)的凋亡是青光眼等眼科疾病的重要病理特征之一,也是导致青光眼视野缺损的主要原因。RGC-5细胞系是目前作为青光眼体外实验模型的一个重要细胞系。谷氨酸是视网膜的主要兴奋性递质,正常情况下不引起毒性。但在眼压升高等原因导致视网膜缺血缺氧时,谷氨酸会大量释放,对视网膜神经节细胞产生毒性作用。谷氨酸的过度表达是导致RGCs凋亡的重要原因。因此,利用谷氨酸诱导的RGC-5凋亡可以作为研究视网膜神经节细胞凋亡及视神经保护的模型。氯离子是生物体内含量最丰富的阴离子,通过跨膜转运和离子通道参与机体多种生物功能。电压门控性氯通道(voltage-gated chloride channnel,CIC)在哺乳动物细胞中广泛表达,ClC-3氯离子通道作为此家族中的一个亚型,是目前研究较为广泛和明确的一种氯离子通道类型,与多种生理功能的调节有关。关于ClC参与细胞凋亡过程已得到广泛证实。转化生长因子β(transforming growth factorβ, TGF-β)是一种多功能的细胞间信号蛋白,在眼部多个组织中表达,并在多种眼科疾病中发挥作用。TGF-β言号从细胞膜转入细胞核内而发挥调控基因表达的作用,此过程需要依赖Smads家族蛋白的调节。TGF-β/Smads信号通路在许多临床疾病中发挥作用,也参与了多种细胞的凋亡过程。在哺乳动物中发现Smad蛋白共有8种,其中参与TGF-β信号转导的主要有Smad2、Smad3、Smad4及Smad7。鉴于此,实验以谷氨酸诱导视网膜神经节细胞凋亡作为研究对象,应用cDNA转染和RNAi方法改变细胞内ClC-3的表达,观察细胞凋亡情况及转化生长因子β2、Smads2、Smads3、Smads4、Smads7的表达变化,以探讨ClC-3及TGF-β/Smads信号转导通路在此过程中的作用。实验中首先应用RT-PCR的方法证实了RGC-5细胞中存在ClC-2、ClC-3、ClC-5、TGF-β1及TGF-β2 mRNA的表达,并发现TGF-β2表达含量明显高于TGF-β1;然后应用免疫组织化学染色的方法证实了ClC-3蛋白在RGC-5细胞中存在表达,并定位于细胞浆,为进一步实验提供了基础和依据。文献报道当谷氨酸刺激浓度为1mM时,RGC-5细胞的凋亡率大约为20%,是比较适宜的研究浓度,因此我们将传代后的细胞贴壁生长24h后,加入含有1mM谷氨酸的无血清DMEM培养液培养24h,从而得到RGC-5细胞凋亡的模型。进一步实验以谷氨酸诱导的RGC-5细胞凋亡为研究对象,应用ClC-3 cDNA技术成功转染细胞,使细胞内ClC-3的mRNA及蛋白质表达均明显升高,应用MTT法、DNA ladder及流式细胞仪检测细胞的凋亡情况。MTT法结果显示细胞的存活率明显上升,DNA ladder及流式细胞仪检测结果表明凋亡率下降,以上结果提示ClC-3的过表达对谷氨酸诱导的RGC-5细胞凋亡具有保护作用。随后实验应用RNAi技术转染谷氨酸诱导的RGC-5细胞,RT-PCR及Western blot结果证实ClC-3的mRNA及蛋白质表达均被明显抑制,应用MTT法、DNA ladder及流式细胞仪检测细胞的凋亡情况。MTT法结果显示细胞的存活率明显下降,DNA ladder及流式细胞仪检测结果表明凋亡率明显上升,结果证实了抑制ClC-3的表达可以促进细胞的凋亡。以上两部分实验从正反两方面提示ClC-3氯通道对谷氨酸诱导的RGC-5细胞凋亡具有保护作用。应用RNAi技术抑制ClC-3的表达后,细胞的凋亡率增加,为了进一步检测TGF-β/Smads信号转导通路在上述过程中所起的作用,我们应用RT-PCR及Western blot的方法,检测TGF-β2.Smad2.Smad3.Smad4. Smad7 mRNA及蛋白含量的变化情况,发现TGF-β2及Smad2.Smad3. Smad4.Smad7 mRNA及蛋白表达均有不同程度的增加,提示TGF-p/Smads信号转导通路可能在谷氨酸诱导的RGC-5细胞凋亡过程中发挥作用。本实验探讨了在谷氨酸诱导的RGC-5细胞凋亡过程中,ClC-3氯离子通道及TGF-p/Smad信号通路的作用,并得出结论:ClC-3氯通道对谷氨酸诱导的RGC-5细胞凋亡具有保护作用,而TGF-p/Smad信号通路可能参与此过程。提示ClC-3氯通道及TGF-p/Smad信号通路可能成为视神经保护一个新靶点,为进一步研究青光眼的发病机制及视神经保护提供了理论基础和实验依据。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 第1章 引言
  • 第2章 综述
  • 2.1 视神经保护的研究进展
  • 2.1.1 对抗谷氨酸的毒性作用
  • 2.1.2 神经营养因子治疗
  • 2.1.3 抗NO活性
  • 2.1.4 钙通道阻断药
  • 2.1.5 RGCs凋亡的基因调控
  • 2.1.6 其他治疗
  • 2.1.7 结束语
  • 2.2 ClC氯离子通道的研究现状
  • 2.2.1 ClC通道的组织分布
  • 2.2.2 ClC通道的分类
  • 2.2.3 ClC氯离子通道的结构特点
  • 2.2.4 ClC氯通道的特性
  • 2.2.5 氯离子通道的生物学特点
  • 2.2.6 各种ClC氯通道简介
  • 2.3 TGF-β/Smads信号转导机制的研究进展
  • 2.3.1 TGF-β信号
  • 2.3.2 TGF-β及TGF-β/Smad在眼科中的研究进展
  • 第3章 ClC氯离子通道及转化生长因子β在RGC-5细胞的表达
  • 3.1 实验材料
  • 3.1.1 主要试剂
  • 3.1.2 主要仪器设备
  • 3.1.3 细胞株
  • 3.1.4 ClC-3 RT-PCR引物
  • 3.2 实验方法
  • 3.2.1 细胞培养
  • 3.2.2 RT-PCR方法检测ClC氯离子通道mRNA在RGC-5细胞上的表达
  • 3.2.3 免疫组织化学方法检测ClC-3氯离子通道蛋白在RGC-5细胞上的表达
  • 3.3 实验结果
  • 3.3.1 RT-PCR检测氯离子通道mRNA在RGC-5细胞上的表达
  • 3.3.2 RT-PCR检测转化生长因子(TGF-β)mRNA在RGC-5细胞上的表达
  • 3.3.3 免疫组织化学染色检测ClC-3蛋白在RGC-5细胞上的表达
  • 3.4 小结
  • 第4章 谷氨酸诱导RGC-5细胞的凋亡
  • 4.1 实验材料
  • 4.1.1 主要试剂
  • 4.1.2 主要仪器设备
  • 4.1.3 实验分组
  • 4.2 实验方法
  • 4.2.1 谷氨酸诱导的RGC-5细胞调亡
  • 4.2.2 MTT法检测谷氨酸对RGC-5细胞调亡的影响
  • 4.2.3 DNA ladder检测谷氨酸对RGC-5细胞调亡的影响
  • 4.2.4 流式细胞仪检测谷氨酸对RGC-5细胞调亡的影响
  • 4.2.5 统计学分析
  • 4.3 实验结果
  • 4.3.1 MTT法检测谷氨酸对RGC-5细胞调亡的影响
  • 4.3.2 DNA ladder检测谷氨酸对RGC-5细胞调亡的影响
  • 4.3.3 流式细胞仪检测谷氨酸对RGC-5细胞调亡的影响
  • 4.4 小结
  • 第5章 ClC-3的过表达对RGC-5细胞凋亡的影响
  • 5.1 实验材料
  • 5.1.1 主要试剂
  • 5.1.2 主要仪器设备
  • 5.1.3 实验分组
  • 5.2 实验方法
  • 5.2.1 cDNA转染
  • 5.2.2 RT-PCR方法检测各组细胞ClC-3 mRNA的表达
  • 5.2.3 Western blot方法检测各组细胞ClC-3蛋白的表达
  • 5.2.4 MTT法检测各组细胞的存活率
  • 5.2.5 DNA ladder检测各组细胞的凋亡率
  • 5.2.6 流式细胞仪检测各组细胞的凋亡率
  • 5.2.7 统计学分析
  • 5.3 实验结果
  • 5.3.1 RT-PCR方法检测各组细胞ClC-3 mRNA的表达
  • 5.3.2 Western blot方法检测各组细胞ClC-3蛋白的表达
  • 5.3.3 MTT法检测各组细胞的存活率
  • 5.3.4 DNA ladder检测各组细胞的凋亡率
  • 5.3.5 流式细胞仪检测各组细胞的凋亡率
  • 5.4 小结
  • 第6章 抑制ClC-3的表达对RGC-5凋亡的影响及TGF-β/Smads信号转导通路的作用
  • 6.1 实验材料
  • 6.1.1 主要试剂
  • 6.1.2 主要仪器设备
  • 6.1.3 实验分组
  • 6.1.4 stealth siRNA引物的设计
  • 6.2 实验方法
  • 6.2.1 RNAi抑制RGC-5内ClC-3的表达
  • 6.2.2 RT-PCR方法检测各组细胞ClC-3 mRNA的表达
  • 6.2.3 Western blot方法检测各组细胞ClC-3蛋白的表达
  • 6.2.4 MTT法检测各组细胞的存活率
  • 6.2.5 DNA ladder检测各组细胞的凋亡率
  • 6.2.6 流式细胞仪检测各组细胞的凋亡率
  • 6.2.7 用RT-PCR及Western blot方法检测各组细胞TGF-β2、Smad2、Smad3、Smad4、Smad7的表达
  • 6.2.8 统计学分析
  • 6.3 实验结果
  • 6.3.1 RT-PCR方法检测各组细胞ClC-3 mRNA的表达
  • 6.3.2 Western blot方法检测各组细胞ClC-3蛋白的表达
  • 6.3.3 MTT法检测各组细胞的存活率
  • 6.3.4 DNA ladder检测各组细胞的凋亡率
  • 6.3.5 流式细胞仪检测各组细胞的凋亡率
  • 6.3.6 RT-PCR及Western blot方法检测各组细胞TGF-β2、Smad2、Smad3、Smad4、Smad7的表达
  • 6.4 小结
  • 第7章 讨论
  • 第8章 结论
  • 参考文献
  • 作者简介及在学期间所取得的科研成果
  • 致谢
  • 相关论文文献

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