NaNO2预处理对过氧化损伤PC12细胞的保护作用

NaNO2预处理对过氧化损伤PC12细胞的保护作用

论文摘要

目的:探讨低剂量亚硝酸钠(NaNO2)预处理对过氧化损伤鼠肾上腺嗜铬细胞瘤(PC12)细胞的保护作用;同时观察其诱导PC12细胞分化的作用。方法:分别以系列浓度的NaNO2作用PC12细胞不同时间,采用四甲基偶氮唑蓝(MTT)法检测NaNO2对PC12细胞活力的影响,研究剂量-效应和时间-效应关系,寻找最低促增殖效应剂量和最佳促增殖效应时间。过氧化损伤PC12细胞模型制作采用400 mmol·L-1乙醇、45 mmol·L-1NaNO2、1.1 mmol·L-1过氧化氢(H2O2)处理2 h。细胞增殖指标采用MTT、活细胞计数法、Hoechst33258荧光单染计数有丝分裂指数;细胞凋亡检测采用Hoechst33258染色计数细胞凋亡率、流式细胞术(FITC-annexinⅤ/ PI)双染法和Hoechst 33258/PI活细胞染色法;比色法测定超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)活力和谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)、丙二醛(MDA)含量。Western-blotting检测相关蛋白表达。瑞氏染色观察PC12细胞分化状态。结果:MTT结果显示,低剂量NaNO2促进细胞增殖,高剂量抑制其增殖,剂量-效应关系呈典型的倒U型曲线。NaNO2最低促增殖剂量为(促增殖效应高于对照组的15%)0.14 mmol·L-1,最佳促增殖效应时间点出现在第24 h;400 mmol·L-1乙醇、45 mmol·L-1的NaNO2、1.1 mmol·L-1H2O2作用PC12细胞2 h,流式细胞术结果显示,细胞凋亡率分别为(50.63±2.14)%、(52.06±8.32)%、(53.6±8.51)%,用0.14 mmol·L-1NaNO2预处理细胞24 h,再分别用上述氧化剂作用2 h,细胞凋亡率分别下降为(19.71±3.19)%、(19.65±2.17)%、(18.23±4.19)%差异具有显著性(P﹤0.05);用0.14 mmol·L-1NaNO2和一氧化氮清除剂(c-PTIO)预处理细胞24 h,再用上述氧化剂作用2 h,细胞凋亡率则分别为(32.28±7.31)%、(38.63±5.08)%、(30.75±3.81)%。Hoechst 33258染色、Hoechst 33258/PI活细胞染色计数细胞死亡率结果与其相似。用400 mmol·L-1乙醇作用PC12细胞2 h,SOD、CAT酶活性,GSH-Px、MDA含量分别为(20.95±1.68) U/mg. Prot、(11.45±0.93) U/mg. Prot、(41.17±2.72)μmol/mg. Prot、(98.38±11.5)μmol/mg .Prot,用NaNO2预处理细胞再用乙醇作用,SOD、CAT酶活性和GSH-Px、MDA含量分别为(62.38±2.98)U/mg. Prot、(19.29±0.27) U/mg. Prot、(62.59±1.41)μmol/mg.Prot、(49.38±2.93)μmol/mg.Prot;用NaNO2+c-PTIO预处理细胞24 h,再用乙醇作用2 h,SOD、CAT酶活性和GSH-Px、MDA含量分别为(40.23±1.57)U/mg.Prot、(15.98±1.9) U/mg.Prot、(51.21±1.52)μmol/mg.Prot、(73.58±14.7)μmol/mg.Prot。用NaNO2预处理再用乙醇作用组,与单纯乙醇组相比,Bax、Caspase-9、Caspase-3蛋白表达量降低,Bcl-2和HIF-1α蛋白表达量升高(P﹤0.05);c-PTIO可以部分逆转这种现象。45 mmol·L-1NaNO2和1.1 mmol·L-1H2O2处理细胞,上述各指标变化情况与乙醇组一致。瑞氏染色结果显示,0.14 mmol·L-1NaNO2作用PC12细胞48 h,明显促进PC12细胞突起生长,缺氧诱导因子(HIF-1α)、血管内皮生长因子(VEGF)表达量增加,作用效果类似神经生长因子(NGF)。c-PTIO可以部分抑制这种现象。结论:1.低剂量NaNO2促进PC12细胞增殖,高剂量抑制其增殖,剂量-效应关系呈典型的倒U型曲线。2.低剂量NaNO2预处理能够使PC12细胞抗氧化酶活性增强、脂质过氧化水平降低、HIF-1α的表达增加,对过氧化损伤的细胞有保护作用。3.低剂量NaNO2可以促进PC12细胞分化。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 前言
  • 1 材料、试剂和仪器
  • 1.1 细胞株
  • 1.2 主要试剂
  • 1.3 主要试剂配制
  • 1.4 仪器
  • 2 实验方法与步骤
  • 2.1 细胞培养
  • 2.2 MTT 法
  • 2.3 台盼兰拒染法活细胞计数
  • 2.4 Hoechst 33258 荧光单染观测细胞凋亡
  • 2.5 FITC-annexinⅤ/PI 双染法流式细胞术测定细胞凋亡
  • 2.6 Hoechst 33258/PI 活细胞双染判定细胞生存状态
  • 2.7 脂质过氧化产物含量与抗过氧化酶活力的测定
  • 2.8 瑞氏染色观察PC12 细胞分化形态
  • 2.9 Western blotting 检测相关蛋白的表达情况
  • 2.10 统计学分析
  • 3 结果
  • 3.1 PC12 细胞接种数量筛选
  • 2 对PC12 细胞活力的影响'>3.2 NaN02 对PC12 细胞活力的影响
  • 2 对PC12 细胞HIF-1α蛋白表达量的影响'>3.3 NaN02 对PC12 细胞HIF-1α蛋白表达量的影响
  • 2 对PC12 细胞分化的影响'>3.4 低剂量NaN02 对PC12 细胞分化的影响
  • 2 对过氧化损伤PC12 细胞的保护作用'>3.5 低剂量NaN02 对过氧化损伤PC12 细胞的保护作用
  • 4 讨论
  • 5 结论
  • 参考文献
  • 文献综述
  • 参考文献
  • 附录:英文缩略词表(Abbreviations)
  • 致谢
  • 读硕士期间发表论文
  • 相关论文文献

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