酵母谷胱甘肽转移酶Gtt2和甲硫氨酸亚砜还原酶Mxr1的结构与功能研究

酵母谷胱甘肽转移酶Gtt2和甲硫氨酸亚砜还原酶Mxr1的结构与功能研究

论文摘要

(Ⅰ)自然界中有一类能够损伤细胞或者破坏遗传物质的有毒物质,叫异生质(xenobiotics)。它们或者自生物体外进入,或者由体内代谢产生。为了消除这些有毒的异生质,生物体在漫长的进化过程中产生了一系列成熟有效的解毒机制。总的来说,这些解毒过程可以分为三个流程:一,通过引入活性功能基团激活化学性质相对稳定的异生质;二,将异生质上的活性功能基团与其他物质偶联,生成新的无毒或弱毒物质;三,偶联后的异生质溶解度大幅上升,可以通过膜表面的通道排出细胞,或者被下游反应最终降解。谷胱甘肽转移酶(glutathione S-transferase,GST,EC 2.5.1.18)就是在解毒第二阶段中发挥重要作用的一种酶。该家族的酶能够催化异生质与谷胱甘肽(glutathione,GSH)巯基的偶联,进而消除异生质的亲电基团,降低毒性,提高溶解度。真核生物通常含有多个直系同源的谷胱甘肽转移酶,参与不同的反应流程。在哺乳动物中,胞质内的谷胱甘肽转移酶全都是以二体形式存在,并根据一级序列被划分为八个主要亚家族:Alpha、Kappa、Pi、Mu、Theta、Zeta、Sigma和Omega。在对非哺乳动物的研究中,一些新的谷胱甘肽转移酶亚家族被报道,如细菌内的Beta亚家族,高等植物中的Phi和Tau亚家族,昆虫中的Delta亚家族。真菌也含有多种谷胱甘肽转移酶,但是一级序列变化较大,目前无法归入依照序列划分的分类体系。除了这种分类体系,还有一种根据谷胱甘肽转移酶催化残基的分类方法。谷胱甘肽转移酶在催化过程中,将依靠某一特定催化残基去降低谷胱甘肽的pKa值,通过氢键稳定巯基负离子,从而加速异生质的亲电攻击。该分类方法依照反应过程中催化残基的类型,将所有的胞内谷胱甘肽转移酶分为三大类:酪氨酸催化(Tyr-),丝氨酸催化(Ser-),半胱氨酸催化(Cys-)。目前所有的胞内谷胱甘肽转移酶都可以归入上述三个大类。据报道,催化残基的突变可以显著降低,甚至完全消除谷胱甘肽转移酶的活性。在酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)中,目前发现七种蛋白具有谷胱甘肽转移酶活性,分别是Gtt1、Gtt2、Gto1、Gto2、Gto3、Grx1和Grx2。从已知的结构看,Grx1和Grx2并不属于谷胱甘肽转移酶家族,因为它们没有谷胱甘肽转移酶的C端结构域,而只具有N端结构域。在剩下的五个蛋白均属于谷胱甘肽转移酶家族,其中Gto1/2/3被归入谷胱甘肽转移酶Omega亚家族,Gtt1和Gtt2因序列同源度过低而无法归入现有的亚家族。虽然这五个谷胱甘肽转移酶的生理和生化功能都被广泛研究,但是到目前为止它们的三维结构还没有被报道。因此,我们展开了一项关于酿酒酵母谷胱甘肽转移酶三维结构的研究。我们解析了酿酒酵母中谷胱甘肽转移酶Gtt2的结构(2.23 (A|°)),以及Gtt2分别与底物谷胱甘肽GSH(2.10 (A|°))和底物类似物磺化谷胱甘肽GTS(2.20 (A|°))的复合物结构。从整体结构上看,Gtt2与常见的谷胱甘肽转移酶没有太大区别。但是通过对催化位点的结构分析、定点突变、光谱学分析和酶活测定,我们发现Gtt2与前人报道的三种催化类型(Tyr-、Ser-、Cys-)显著不同。Gtt2是通过C端结构域上的一个丝氨酸和一个组氨酸共同稳定的水分子来发挥催化功能的,而不是通过某个催化残基上的极性原子。另外,同源序列比对、定点突变与酶活测定证明,伸向催化位点的α1螺旋的N端,由于空间位阻的原因,只能是甘氨酸或者丙氨酸这两种侧链较小的残基。最终,我们定义了一类新的谷胱甘肽转移酶催化类型:非典型性(Atypical-type)谷胱甘肽转移酶。(Ⅱ)硫氧还蛋白(thioredoxin,Trx)是一类广泛存在于自然界中的“巯基—二硫键”交换蛋白。它参与了很多重要的胞内反应,比如还原甲硫氨酸亚砜、核糖核苷酸、过氧化物等等。硫氧还蛋白家族都具有一个高度保守的CXXC活性相关结构域。反应过程中,第一个半胱氨酸会攻击底物蛋白的分子内二硫键,将分子内二硫键转化成分子间二硫键,形成反应中间态。此时硫氧还蛋白和底物蛋白会形成一个极不稳定的二硫键连接的复合物。之后,该分子间二硫键会被硫氧还蛋白CXXC中的第二个Cys攻击,中间态复合物解体,释放出被还原了的底物蛋白和被氧化了的硫氧还蛋白。甲硫氨酸是一种对氧化非常敏感的氨基酸。在活性氧簇或活性氮簇存在时,甲硫氨酸很容易被氧化成甲硫氨酸亚砜(Met-SO)。由于是手性分子,所以氧化产物是以镜像对映体的形式(Met-S-SO and Met-R-SO)混合存在。蛋白表面的甲硫氨酸被氧化后会对细胞造成一系列损伤并最终加速衰老过程。然而,细胞内有一种称为甲硫氨酸亚砜还原酶(methionine-S-sulfoxide reductase,Msr)的蛋白,能够用硫氧还蛋白Trx提供的电子,去还原被氧化生成的甲硫氨酸亚砜,重新变成甲硫氨酸。最近,法国一科研小组报道,不光是硫氧还蛋白可以给甲硫氨酸亚砜还原酶提供电子,谷氧还蛋白/谷胱甘肽系统同样可以作为还原力的提供者。不论其还原力来源于哪里,甲硫氨酸亚砜还原酶都被证明在酿酒酵母、昆虫、哺乳动物体内,有延长寿命的作用。到目前为止,一共有三个甲硫氨酸亚砜还原酶家族被报道(MsrA、MsrB、fRMsr)。MsrA和MsrB是最先被发现的两个家族,对底物有手性要求,分别能还原Met-S-SO和Met-R-SO。他们不但能够还原游离状态的甲硫氨酸亚砜,还能够还原蛋白表面的甲硫氨酸亚砜。据报道,一系列与人类疾病相关的蛋白都被证明是MsrA和MsrB的底物,比如钙调蛋白、HIV-2蛋白酶、Alpha-1蛋白酶抑制剂等等。fRMsr家族直到最近才被发现,它的特点是只能够还原游离状态的Met-R-SO,对蛋白表面的Met-R-SO则无能为力。尽管这三个家族有不同的起源、结构、底物特异性和物种分布,但它们所涉及的催化机理却是基本一致的。都是甲硫氨酸亚砜被还原并释放,催化半胱氨酸的巯基氧化成次磺酸,转化为分子内二硫键,最后由硫氧还蛋白或者其他电子供体还原Msr的分子内二硫键。现在已经有七个不同物种的MsrA结构被报道。不论是X射线晶体衍射方法解析的还是核磁共振波谱法解析的,它们的核心结构域基本一致,可以很好的叠合。各结构之间的区别主要集中在活性位点周围的柔性区,尤其是C末端的柔性区,这恰恰是参与催化的一个半胱氨酸所在的位置,暗示这些柔性区的构象变化很可能会促进分子内二硫键的形成,并与硫氧还蛋白相互作用有关。酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)中存在三个甲硫氨酸亚砜还原酶,分别是Mxr1/MsrA、Mxr2/MsrB和Ykg9/fRMsr。尽管这三个甲硫氨酸亚砜还原酶的机制已经被广泛研究,但是它们为什么能够与多种的底物蛋白或者硫氧还蛋白相互作用,仍然还不清楚。为此,我们解析了Mxr1还原态(2.04 (A|°)),二体氧化态(1.90 (A|°))以及与硫氧还蛋白Trx2结合的复合物(2.70 (A|°))的晶体结构。通过结构叠合分析,我们发现活性位点周围的三段柔性区构象变化很大,可以根据底物蛋白的表面而改变构象,这很有可能就是甲硫氨酸亚砜还原酶底物多样性的原因。另外,该区域与Trx2相互作用时所显示的柔性,提供了Trx能用单一活性位点识别不同底物蛋白的结构基础。该发现将为Trx底物蛋白的预测提供新的重要思路。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 第一部分 酵母谷胱甘肽转移酶Gtt2 的结构与功能研究
  • 第一章 谷胱甘肽转移酶的研究背景
  • 1.1 引言
  • 1.2 谷胱甘肽转移酶及其生化机理
  • 1.2.1 谷胱甘肽转移酶的概述
  • 1.2.2 谷胱甘肽转移酶的同源结构及底物结合位点
  • 1.2.3 谷胱甘肽转移酶的催化机理
  • 1.2.4 酿酒酵母中的谷胱甘肽转移酶
  • 第二章 实验材料、设备与方法
  • 2.1 实验材料与设备
  • 2.1.1 菌株、质粒
  • 2.1.2 试剂、酶
  • 2.1.3 仪器设备
  • 2.2 实验方法
  • 2.2.1 重组质粒的构建
  • 2.2.2 目的蛋白的表达与纯化
  • 2.2.3 圆二色谱(Circular Dichroism,CD)分析
  • 2.2.4 蛋白质结晶以及数据收集
  • 2.2.5 晶体结构解析和精修
  • 2.2.6 Gtt2 野生型及突变体的活性检测
  • 2.2.7 Gtt2 结合的谷胱甘肽的pKa 值测定
  • 第三章 结果与讨论
  • 3.1 Gtt2 的纯化
  • 3.1.1 Gtt2 的N 端信号肽
  • 3.1.2 Gtt2 蛋白的表达与纯化
  • 3.2 野生型Gtt2 及其突变体的圆二色谱实验结果
  • 3.3 Gtt2 的晶体学研究
  • 3.3.1 Gtt2 晶体的生长与优化
  • 3.3.2 Gtt2 衍射数据的收集与处理以及晶体结构的解析
  • 3.3.3 Gtt2 结构模型的质量评估
  • 3.4 Gtt2 的晶体结构与活性位点
  • 3.4.1 Gtt2 的总体结构
  • 3.4.2 Gtt2 的活性位点
  • 3.5 Gtt2:一种新的催化类型的谷胱甘肽转移酶
  • 3.5.1 激活谷胱甘肽的因子的确定
  • 3.5.2 检验传统的催化残基对Gtt2 的作用
  • 3.5.3 Gly27 的重要作用
  • 3.5.4 Gtt2 催化机理的模型
  • 3.6 非典型性谷胱甘肽转移酶的多序列比对分析
  • 本篇小结
  • 参考文献
  • 第二部分 酵母甲硫氨酸亚砜还原酶Mxr1 结构与功能研究
  • 第四章 甲硫氨酸亚砜还原酶的研究背景
  • 4.1 引言
  • 4.2 甲硫氨酸亚砜还原酶及其反应机制
  • 4.2.1 甲硫氨酸亚砜还原酶的概述
  • 4.2.2 甲硫氨酸亚砜还原酶MsrA 的同源结构及底物结合位点
  • 4.2.3 甲硫氨酸亚砜还原酶MsrA 的催化机理
  • 4.2.4 甲硫氨酸亚砜还原酶MsrA 的再生机制
  • 4.2.5 酿酒酵母中的甲硫氨酸亚砜还原酶
  • 第五章 实验材料、设备与方法
  • 5.1 实验材料与设备
  • 5.1.1 菌株、质粒
  • 5.1.2 试剂、酶
  • 5.1.3 仪器设备
  • 5.2 实验方法
  • 5.2.1 重组质粒的构建
  • 5.2.2 目的蛋白的表达与纯化
  • 5.2.3 参与Mxr1-Trx2 复合物形成的半胱氨酸分析
  • 5.2.4 Mxr1-Trx2 复合物的制备
  • 5.2.5 蛋白质结晶以及数据收集
  • 5.2.6 晶体结构解析和精修
  • 第六章 结果与讨论
  • 6.1 Mxr1 和Trx2 的纯化
  • 6.1.1 Mxr1 的纯化
  • 6.1.2 Trx2C34S的纯化
  • 6.2 Mxr1-Trx2 复合物的纯化
  • 6.3 Mxr1 与Mxr1-Trx2 的晶体学研究
  • 6.3.1 Mxr1 与Mxr1-Trx2 晶体的生长与优化
  • 6.3.2 Mxr1 相关晶体衍射数据的收集、处理、结构解析
  • 6.3.3 Mxr1 结构模型的质量评估
  • 6.4 Mxr1 与Trx2 参与复合物形成半胱氨酸的鉴定
  • 6.5 还原态Mxr1 的晶体结构
  • 6.6 氧化态Mxr1 的晶体结构
  • 6.6.1 Mxr1 氧化态单体的结构
  • 6.6.2 Mxr1 氧化态二体的结构
  • 6.7 Mxr1-Trx2 复合物的晶体结构
  • 6.7.1 Mxr1-Trx2 的总体结构
  • 6.7.2 Mxr1-Trx2 的相互作用界面
  • 6.8 从Mxr1 的可塑性看MsrA 与MsrB 家族的底物多样性
  • 6.9 从Trx 底物蛋白的可塑性看Trx 底物蛋白的多样性
  • 本篇小结
  • 参考文献
  • 第三部分 其他工作
  • 第七章 其他Trx 底物蛋白与Trx 的复合物研究
  • 7.1 引言
  • 7.2 背景介绍、实验结果与讨论
  • 7.2.1 Tsa1 及Tsa1-Trx2 的背景介绍、实验结果与讨论
  • 7.2.2 Tsa2 及Tsa2-Trx2 的背景介绍、实验结果与讨论
  • 7.2.3 Met16 及Met16-Trx2 的背景介绍、实验结果与讨论
  • 7.2.4 Gpx3 及Gpx3-Trx2 的背景介绍、实验结果与讨论
  • 第八章 参与合作的其他工作
  • 8.1 概述
  • 参考文献
  • 附录
  • A:pET28b 与pET29b 的载体改造
  • B:引物设计规则
  • C:大肠杆菌感受态的制备
  • D:聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)的实验流程
  • 致谢
  • 攻读学位期间发表的学术论文与参加的学术会议
  • 相关论文文献

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