内皮祖细胞移植对大鼠短暂性大脑中动脉栓塞治疗作用及机制的初步研究

内皮祖细胞移植对大鼠短暂性大脑中动脉栓塞治疗作用及机制的初步研究

论文摘要

背景在缺血性脑血管病的治疗研究中,神经保护理论在基础研究和动物实验中都取得了较好的效果,但临床试验无明显疗效。溶栓治疗可有效恢复局部脑血流供应、挽救缺血半暗带组织,促进神经功能恢复,但由于时间窗过短(≤4.5h)限制了临床广泛应用。因此,研究者的眼光从单纯神经或血管的保护扩展到了神经血管单元保护的策略。2003年,ABPN提出设立血管神经病学专业的申请并得到了批准[1]。此后,人们开始把保护神经血管单元的研究作为解决脑缺血治疗困境的重要策略之一。在有关神经血管单元保护策略的研究中,人们改变了以往过多关注神经元或血管保护的理念,开始把神经元、胶质细胞、微血管内皮细胞及基质之间的相互作用作为一个整体来看待。其中,EPCs作为研究这一策略的途径之一,也已成为了大家关注的热点。EPCs移植可以在修复血管内皮损伤、促进血管生成(angiogenesis)和血管发生(vasculogenesis)方面发挥保护作用,这一结果已得到了动物实验的验证[2、3]。同时,也有学者通过总结前人的实验研究推测[4],EPCs移植还可能通过旁分泌细胞因子(VEGF、BDNF、HGF等)发挥神经保护作用,而且这一作用是独立于血管生成和血管发生作用以外的。结合以上观点,我们推测,EPCs移植有可能对神经血管单元发挥保护作用,而这一保护作用的重要机制之一是通过EPCs旁分泌VEGF介导的。VEGF称为血管内皮生长因子,它通过与受体结合促进内皮细胞增殖和新生血管形成。进一步研究表明,在神经细胞的应激状态下(如缺氧、葡萄糖剥夺等),VEGF有神经保护和神经营养作用[5]。这一作用可能是通过抑制神经细胞凋亡、促进神经发生和血管发生等途径实现。已有的实验证实,体外培养的EPCs有分泌VEGF的作用[6]。但是,EPCs在体研究,即通过EPCs移植能否对脑缺血损伤发挥神经保护作用?其作用机制是什么?目前对这些问题的研究尚未取得一致意见。为此,我们的实验从EPCs可以在体外分泌VEGF的研究基础入手,通过构建大鼠tMCAO模型,经颈内动脉移植EPCs,采用免疫组织化学方法观察EPCs移植后是否能在缺血局部脑组织定位并旁分泌VEGF,并采用免疫组织化学、分子生物学等技术,观察不同时相皮质神经元凋亡及VEGF、caspase-3表达水平变化,探讨三者之间变化的关系,旨在初步阐明EPCs移植对大鼠tMCAO模型的治疗作用及其机制,为临床缺血性脑血管疾病的治疗提供新的方法及理论依据。目的观察EPCs经颈内动脉移植对tMCAO大鼠脑缺血损伤的保护作用,并初步探讨其机制。方法⑴分离、培养、鉴定大鼠骨髓来源EPCs;⑵建立大鼠tMCAO模型;⑶经颈内动脉移植EPCs到tMCAO大鼠,设立PBS经颈内动脉注射作为对照;⑷观察如下指标:①采用干细胞染色示踪技术,观察EPCs能否定位于缺血局部脑组织;②采用普通HE染色观察大鼠缺血部位病理变化;③分别于移植后的第1、3、5、7天采用TUNEL法观察皮质神经元凋亡变化、免疫组化法检测VEGF、Caspase-3表达变化、Western Blot检测缺血局部脑组织VEGF表达量的变化。结果1、分离的大鼠骨髓来源单核细胞,经过VEGF、bFGF的诱导分化,培养的细胞表现出典型的“血岛样”集落、“铺路石”样细胞形态,具有吞噬DiI-ac-LDL功能,CD34和vWF细胞免疫荧光染色阳性。提示分离培养的细胞为EPCs。2、EPCs吞噬DiI-ac-LDL染色后胞浆呈红色荧光,经颈内动脉移植到大鼠tMCAO模型,3天后冰冻切片观察缺血局部脑组织,可以在毛细血管壁见到大量红色荧光细胞,在正常脑组织少见红色荧光细胞。PBS对照组缺血局部脑组织毛细血管壁未见红色荧光细胞。提示经内颈动脉注射,EPCs可以定位于缺血脑组织。3、颈内动脉移植EPCs对tMCAO大鼠皮质神经元凋亡的影响:通过TUNEL法,观察缺血部位神经元凋亡,发现PBS颈内动脉注射对照组阳性细胞第1、3、5天分别为(105.72±2.69)、(132.96±2.88)、(145.12±3.22),随时间延长逐渐升高且与前一时相点相比有显著差异(P<0.05);而EPCs移植组阳性细胞数分别为(91.84±3.21)、(82.08±2.77)、(54.68±3.12),随时间延长逐渐降低且与前一时相点相比有显著差异(P<0.05)。与对应时相比较,经颈内动脉注射EPCs后大鼠皮质神经元凋亡数量均明显少于PBS对照组(P<0.05)。提示经颈内动脉移植EPCs可以明显减少tMCAO大鼠脑组织神经元凋亡。4、颈内动脉移植EPCs对tMCAO大鼠皮质Caspase-3表达的影响:通过免疫组化法,观察缺血部位神经元Caspase-3表达阳性细胞数的变化,发现PBS对照组阳性细胞数第1、3、5天分别为(81.48±3.80)、(103.00±2.73)、(122.92±2.65),随时间延长逐渐增加且与前一时相点相比有显著差异(P<0.05);经颈内动脉EPCs移植组Caspase-3阳性细胞数分别为(71.88±2.55)、(60.84±3.06)、(31.24±2.73),随时间延长逐渐减少且与前一时相点相比有显著差异(P<0.05)。与对应时相PBS对照组比较,经颈内动脉注射EPCs后大鼠皮质Caspase-3阳性细胞数均显著减少(P<0.05)。提示经颈内动脉移植EPCs可以明显抑制tMCAO大鼠Caspase-3表达。5、颈内动脉移植EPCs对tMCAO大鼠缺血局部脑组织VEGF表达的影响:通过免疫组化法,从形态学上发现EPCs移植组有较多VEGF阳性细胞,而PBS对照组对应区域少见VEGF阳性细胞。进一步应用Western Blot观察缺血局部脑组织VEGF蛋白表达量变化发现:PBS对照组VEGF表达量第1、3、5天分别为(0.21±0.02)、(0.34±0.03)、(0.29±0.05),随时间延长呈不稳定的低水平表达;而EPCs移植组VEGF蛋白表达量分别为(0.47±0.02)、(0.56±0.01)、(0.99±0.03),随时间延长逐渐增加且与前一时相点相比有显著差异(P<0.05)。与对应时相PBS对照组比较,经颈内动脉注射EPCs后大鼠缺血局部脑组织VEGF表达量均显著增加(P<0.05)。提示经颈内动脉移植EPCs可以明显上调tMCAO大鼠缺血局部脑组织VEGF表达。结论1、分离的大鼠骨髓来源单核细胞,经过VEGF、bFGF的诱导分化,鉴定符合EPCs特征。2、EPCs经颈内动脉移植tMCAO大鼠后,较多定位于缺血局部脑组织毛细血管壁,较少定位于正常侧脑组织毛细血管壁。3、EPCs移植组与PBS组相比较,随着移植后时间的延长,皮质神经元凋亡数量逐渐减少,同时缺血局部脑组织VEGF蛋白表达逐渐升高,伴有缺血脑组织Caspase-3蛋白表达逐渐降低。研究结果提示经颈内动脉移植EPCs对tMCAO大鼠脑组织的神经保护作用可能与其通过旁分泌VEGF抑制了Caspase-3表达,从而减少了皮质神经元凋亡有关。

论文目录

  • 英文缩略词表
  • Abstract
  • 摘要
  • 前言
  • 第一节 材料与方法
  • 1 材料
  • 2 方法
  • 第二节 结果
  • 1 EPCs 鉴定结果(图 1 )
  • 2 大鼠 tMCAO 模型制作(图 2 )
  • 3 大鼠脑组织 HE 染色结果(图 3 )
  • 4 冰冻切片观察 EPCs 定位结果(图 4 )
  • 5 EPCs 移植后不同时间皮质神经元凋亡变化(表 1A、B,图 5 )
  • 6 EPCs 移植后不同时间皮质神经元 Caspase-3 表达变化 (表 2A、B,图 6 )
  • 7 EPCs 移植后缺血局部脑组织 VEGF 免疫组化结果(图 7 )
  • 8 EPCs移植后缺血部位脑组织VEGF 表达量Western Blot 检测结果(表 3A、B,图 8 )
  • 第三节 讨论
  • 全文小结
  • 致谢
  • 参考文献
  • 文献综述 内皮祖细胞及其在脑梗死中的应用进展
  • 参考文献
  • 硕士研究生期间发表的文章
  • 相关论文文献

    • [1].海拔高度对冠心病患者EPCs数量及功能的研究[J]. 中国循证心血管医学杂志 2015(06)
    • [2].EFFECTS OF EPCs OR b-FGF INTRAMYOCARDIAL INFUSION ON CARDIAC FUNCTION AND NEOVASCULARIZATION FOR DILATED CARDIOMYOPATHY RATS[J]. Journal of Shanghai Second Medical University(Foreign Language Edition) 2008(02)
    • [3].丁苯酞对急性缺血性脑卒中患者外周血EPCs的影响[J]. 实用药物与临床 2016(03)
    • [4].姜黄素对兔颈动脉斑块稳定性及EPCs活力的影响[J]. 世界中医药 2017(06)
    • [5].COPD患者外周血中EPCs增殖、迁移、黏附及血管形成功能研究[J]. 海南医学院学报 2014(11)
    • [6].补肾活血中药激活MMP-9信号通路动员大鼠骨髓EPCs的分子机制研究[J]. 中国中西医结合杂志 2013(06)
    • [7].老年性耳聋患者外周血EPCs数量及增殖变化研究[J]. 中华全科医学 2012(08)
    • [8].某核电站EPCS总承包模式下项目程序体系建设及运行的难点与对策[J]. 低碳世界 2016(33)
    • [9].Role of Axl in Preeclamptic EPCs Functions[J]. Journal of Huazhong University of Science and Technology(Medical Sciences) 2016(03)
    • [10].EPCs在肝癌模型中的分布及其对肝癌形成的影响[J]. 世界华人消化杂志 2011(16)
    • [11].桃红四物汤对大鼠创伤性股骨头缺血坏死模型外周血中EPCs表达影响[J]. 湖南中医药大学学报 2017(01)
    • [12].培哚普利对冠心病患者血管内皮功能及EPCs水平的影响[J]. 辽宁医学院学报 2016(01)
    • [13].Combined Use of Transmyocardial Laser Revascularization and Endothelial Progenitor Cells Enhances Neovascularization and Regional Contractility in a Canine Model of Ischemic Hearts[J]. Journal of Huazhong University of Science and Technology(Medical Sciences) 2014(02)
    • [14].EPCs促血管化组织工程骨修复大段骨缺损的早期组织学评价[J]. 重庆医学 2009(22)
    • [15].阿托伐他汀辅助治疗急性缺血性脑卒中对循环内皮祖细胞及神经功能的影响[J]. 现代中西医结合杂志 2017(28)
    • [16].同型半胱氨酸对脑血管疾病的始动因素-EPCs作用的研究进展[J]. 中国实验诊断学 2013(11)
    • [17].A novel vWF A3-GPI modified EPCs to enhance its adhesion ability to collegen[J]. Journal of Medical Colleges of PLA 2011(04)
    • [18].岩藻黄素在振荡剪切应力致EPCs功能改变及衰老中的影响作用[J]. 中国海洋药物 2020(05)
    • [19].灯盏细辛注射液对血瘀型急性脑梗死患者血清VEGF、MMP-9、EPCs水平的影响[J]. 中成药 2015(11)
    • [20].电针对局灶性脑缺血再灌注大鼠血中EPCs含量及其神经功能缺损程度的影响[J]. 中医药通报 2017(03)
    • [21].血管内皮祖细胞与经皮冠状动脉介入治疗术后再狭窄及其应用前景[J]. 心脏杂志 2010(05)
    • [22].锌指基因ZFP580通过eNOS/NO信号通路促进EPCs分化的作用机制[J]. 武警后勤学院学报(医学版) 2017(11)
    • [23].外源性联合应用EPCs和SDF-1α对大鼠肝移植缺血再灌注的保护作用[J]. 重庆医科大学学报 2018(01)
    • [24].黄芪丹参配伍对大鼠骨髓源EPCs功能的影响[J]. 辽宁中医杂志 2018(11)
    • [25].载脂蛋白A损伤小鼠骨髓源性EPCs血管发生能力及其机制[J]. 生物化学与生物物理进展 2013(08)
    • [26].EPCs、IMA、hs-CRP水平变化与脑梗死病情程度关系分析[J]. 基因组学与应用生物学 2018(09)
    • [27].药物诱导内皮祖细胞的动员[J]. 中华高血压杂志 2010(05)
    • [28].黄芪甲苷对EPCs中SDF-1α/CXCR4的调控作用[J]. 中国病理生理杂志 2019(09)
    • [29].消渴通痹颗粒对体外高糖环境下EPCs迁移及管腔形成的影响[J]. 空军医学杂志 2018(04)
    • [30].缺血性脑卒中患者外周血血管内皮祖细胞水平变化及意义[J]. 山东医药 2017(37)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  ;  

    内皮祖细胞移植对大鼠短暂性大脑中动脉栓塞治疗作用及机制的初步研究
    下载Doc文档

    猜你喜欢