论文摘要
耐酸性α-淀粉酶在低pH值的条件下,以随机方式切断淀粉分子内的α-1,4糖苷键,生成低聚糖、麦芽糖和糊精等,由于其在酸性条件下的稳定性,它在淀粉加工、酿造等行业的应用比普通α-淀粉酶更有优越性。随着淀粉工业的发展,耐酸性α-淀粉酶的应用越来越多,有极大的开发价值。本文对一株产耐酸性α-淀粉酶的黑曲霉PZ301进行了研究。本实验对产耐酸性α-淀粉酶PZ301菌株进行形态学鉴定,根据其菌落形态和产孢结构,真菌PZ301被鉴定为黑曲霉(Aspergillus niger)。研究了微波化学复合诱变对菌株PZ301的致死效应:NTG浓度为250μg/mL处理90min后,经频率2450HZ、输出功率800W微波辐照30s时,PZ301孢子的致死率为86.6%,正突变率最高。在此条件下对菌株PZ301进行2轮复合诱变,得到1株耐酸性α-淀粉酶活力较高的菌株,酶活力为1.985IU/mL,较出发菌株的酶活力提高了23%。对菌株PZ301产耐酸性α-淀粉酶固态发酵的条件进行了摸索,实验结果表明最佳的培养基组成为:麸皮7g,复合碳源(葡萄糖+淀粉(质量比为1:4))0.28g,(NH4)2SO40.14g;最佳产酶的固态发酵条件:料水比为1∶2,接种量1mL(孢子浓度107个/mL),于35℃条件下发酵72小时,酶活力为40IU/g。比未优化前的酶活力提高55%。建立了核酸与菌丝体之间的定量关系,并以此为基础,测定了PZ301固态发酵中生物量的变化,得到生长曲线。发现在优化培养条件下,PZ301菌株的生物量和耐酸性α-淀粉酶在72h时均达到最高,表明耐酸性α-淀粉酶系同步合成型酶。菌株PZ301固态发酵培养72h后,用5倍体积0.05mol/L pH4.2的柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液浸提固态干曲,过滤、离心后得到粗酶液,用饱和度50-80%硫酸铵进行分级沉淀,复溶、离心取上清液;用3%粉末活性碳对上清液进行脱色,离心,对上清液进行超滤(超滤膜为100kDa)。取超滤后大于100kDa以上组分在pH5.4条件下进行Sephadex DEAE A-50离子交换柱层析,收集有耐酸性α-淀粉酶活性的6号峰,除盐浓缩后进行TSK-Gel G4000PWXL柱层析,PAGE电泳得到单一的条带,并通过SDS-PAGE电泳测定分子量,其分子量为58.74KDa。对该酶的酶学性质研究,实验结果表明:粗酶的最适反应温度和pH值分别为50℃和4.2,在pH2.2-8.0范围酶的稳定性较高,半失活温度为65℃。
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