猪MX1基因在气道上皮细胞SIV感染过程中的表达

猪MX1基因在气道上皮细胞SIV感染过程中的表达

论文摘要

Mx1基因是1964年在A2G小鼠上发现的抗流感病毒感染的基因。干扰素诱导产生的Mx蛋白具有广谱的抗病毒效应,使先天性主动免疫过程中起重要作用的蛋白因子之一。在流感病毒感染的过程中,它可以结合到流感蛋白的NP蛋白上,阻止病毒的增殖,因此具有抗流感病毒功能。猪Mx1基因已确定为猪抗病育种的候选基因。猪流感是对养猪业危害极大的一种传染病,病原为猪流感病毒(Swine influenza virus,SIV)。流感病毒存在于病猪和带毒猪的呼吸道分泌物中。我国猪养殖集约化程度低,即使猪患有流感,也没有引起大规模的爆发,因此我国的主要的商品猪对流感的抗性普遍比较弱,随着集约化饲养的发展,存在猪流感爆发的可能性,一旦爆发就会造成重大损失。因此抗病育种十分重要。本研究培养了SIV能特异性感染的猪气道上皮细胞,建立了干扰素诱导Mx1基因表达的体系,应用实时荧光定量PCR的方法检测Mx1基因的表达情况,探索了最佳诱导时间和诱导浓度。并对细胞在SIV感染早期Mx1基因的表达情况进行了研究。结论如下:(1)猪气道上皮细胞培养体系为DMEM/F12培养基+10%血清+1%双抗。所得细胞能够使SIV在其中增殖。(2) Mx1基因在细胞中的表达随干扰素诱导浓度的增加而增加,最适宜浓度为1000IU/mL。(3) Mx1基因在细胞中的表达不随干扰素诱导时间增加而增加,而是在4h左右达到最高。随后逐渐下降(4) Mx1基因在SIV早期感染中的表达不随时间的增加而增加而是在4-6小时达到最高,随后逐渐下降。其表达趋势与干扰素诱导的表达趋势大致相同。并且其表达趋势与人相近,可能说明猪与人的抗病能力存在某些相似情况,猪与人可能会感染相同的疾病。

论文目录

  • 中文摘要
  • 英文摘要
  • 1 前言
  • 1.1 猪的抗病育种
  • 1.1.1 猪的育种趋势
  • 1.1.2 抗病育种
  • 1.1.3 抗病育种面临的困难与前景展望
  • 1.2 猪流感病毒研究进展
  • 1.2.1 SIV的生物学特性
  • 1.2.2 SIV分子生物学特性
  • 1.3 抗病性状相关基因
  • 1.3.1 NRAMP1基因
  • 1.3.2 干扰素基因
  • 1.3.3 MHC(主要组织相容性复合体)
  • 1.3.4 ETEC K88受体基因
  • 1.3.5 其他基因
  • 1.4 拟研究的基因MX1基因
  • 1.4.1 MX1的发现
  • 1.4.2 MX1结构与功能
  • 1.4.3 Mx1的应用与前景
  • 1.5 实时荧光定量PCR
  • 1.6 本研究目的与意义
  • 2 材料与方法
  • 2.1 实验材料
  • 2.1.1 实验动物
  • 2.1.2 主要实验仪器
  • 2.1.3 克隆载体和菌株
  • 2.1.4 主要药品
  • 2.1.5 主要试剂配置
  • 2.1.6 主要生物学软件
  • 2.2 实验方法
  • 2.2.1 气道上皮细胞的体外培养
  • 2.2.2 间接免疫荧光法鉴定细胞感染情况
  • 2.2.3 细胞攻毒条件的确定
  • 2.2.4 细胞攻毒
  • 2.2.5 细胞总RNA的提取与质量检测
  • 2.2.6 定性与定量检测
  • 3 结果与分析
  • 3.1 气道上皮细胞培养体系的建立
  • 3.1.1 细胞的分离与培养
  • 3.1.2 传代培养
  • 3.1.3 生长曲线
  • 3.2 细胞感染后间接免疫荧光检测
  • 3.3 细胞 RNA的提取与质量检测
  • 3.4 Mx1的扩增与鉴定
  • 3.5 细胞攻毒后表达检测
  • 3.5.1 标准曲线的制作
  • 3.5.2 干扰素最佳诱导浓度的结果
  • 3.5.3 干扰素最佳诱导时间的结果
  • 3.5.4 SIV感染过程中的Mx1表达情况
  • 4 讨论
  • 4.1 气道上皮细胞的体外培养
  • 4.1.1 取材
  • 4.1.2 消化方法
  • 4.1.3 培养液
  • 4.2 感染后细胞免疫荧光检测
  • 4.3 实时荧光定量 PCR检测
  • 4.3.1 引物设计
  • 4.3.2 实验操作注意事项
  • 4.3.3 荧光检测条件的优化
  • 4.4 Mx1诱导与表达情况
  • 4.4.1 干扰素诱导浓度对Mx1表达的影响
  • 4.4.2 干扰素诱导时间对Mx1表达的影响
  • 4.4.3 SIV感染过程中的Mx1表达情况
  • 5 结论
  • 致谢
  • 参考文献
  • 硕士期间发表的文章
  • 相关论文文献

    • [1].赤眼鳟Mx1基因的cDNA克隆及表达特性[J]. 水生生物学报 2020(04)
    • [2].藏猪Mx1基因外显子14的遗传变异分析[J]. 黑龙江畜牧兽医 2012(01)
    • [3].Mx1基因在云南地方鸡种肝脏中的表达分析[J]. 中国家禽 2017(12)
    • [4].梅山猪Mx1基因第14外显子多态性及其与繁殖性能的关联分析[J]. 中国畜牧兽医 2015(12)
    • [5].Mx1蛋白在颅内感染患者外周血中的表达及其作用初探[J]. 现代免疫学 2016(06)
    • [6].陕西地区荷斯坦牛Mx1基因外显子多态性分析[J]. 家畜生态学报 2014(05)
    • [7].猪Mx1基因cDNA的克隆及序列分析[J]. 云南农业大学学报(自然科学版) 2011(06)
    • [8].连翘酯苷对IFN-α和Mx1表达的影响[J]. 中国农业科学 2010(15)
    • [9].猪Mx1基因的克隆表达及抗病毒活性研究[J]. 中国动物传染病学报 2014(04)
    • [10].东串猪Mx1基因第14外显子多态性及组织表达谱分析[J]. 中国畜牧兽医 2018(02)
    • [11].野猪和16个国内外猪种Mx1基因第14外显子多态性分析[J]. 畜牧兽医学报 2008(03)
    • [12].梅山猪Mx1基因第14外显子多态性及其与部分免疫指标和早期生长性能的关联分析[J]. 中国畜牧杂志 2014(05)
    • [13].ICR小鼠Mx1基因的克隆及组织表达[J]. 动物医学进展 2011(04)
    • [14].单纯疱疹病毒性脑炎小鼠脑组织Mx1、IFN-α的表达[J]. 华中科技大学学报(医学版) 2012(05)
    • [15].猪Mx1和牛Mx1蛋白在PK-15细胞中的表达及其对伪狂犬病病毒的抑制[J]. 中国生物工程杂志 2015(03)
    • [16].黄芩苷诱导大鼠气管上皮细胞Mx1和PKR表达的研究[J]. 北京农学院学报 2013(01)
    • [17].实时荧光定量PCR检测猪源Mx1方法的建立及应用[J]. 南京农业大学学报 2013(01)
    • [18].猪Mx1基因及分段基因真核表达载体的构建和鉴定[J]. 畜牧与兽医 2019(04)
    • [19].藏猪与大约克猪Mx1基因的表达差异研究[J]. 高原农业 2020(02)
    • [20].HSV-Ⅰ感染后人小胶质细胞MX1蛋白表达变化及其作用初探[J]. 中国神经免疫学和神经病学杂志 2014(04)
    • [21].p150Sal2在人卵巢癌细胞株中促进MX1基因的表达[J]. 现代生物医学进展 2011(17)
    • [22].猪源Mx1基因的原核表达及其抗血清制备[J]. 南京农业大学学报 2012(01)
    • [23].猪MX1基因第8内含子多态性及与生产性状的关联分析[J]. 华中农业大学学报 2010(04)
    • [24].猪抗病基因Mx1第14外显子多态性与免疫性能的相关分析[J]. 畜牧与兽医 2012(02)
    • [25].牛Mx1基因重组慢病毒载体的构建及沉默Mx1细胞的获得[J]. 中国兽医学报 2016(12)
    • [26].猪Mx1基因真核表达载体的构建及表达[J]. 中国兽医学报 2011(12)
    • [27].山羊IL-1β IL-8和Mx1因子实时荧光定量检测方法的建立[J]. 中国兽医杂志 2019(01)
    • [28].东北民猪荷包猪抗性基因多态性及其与免疫指标的相关性研究[J]. 畜牧与兽医 2011(08)

    标签:;  ;  ;  ;  

    猪MX1基因在气道上皮细胞SIV感染过程中的表达
    下载Doc文档

    猜你喜欢