小麦体细胞杂交中外源染色质的消减与渐渗研究

小麦体细胞杂交中外源染色质的消减与渐渗研究

论文摘要

体细胞杂交技术能够克服有性杂交不亲和等障碍,产生多种多样的有性杂交无法实现的作物新类型。目前,体细胞杂交育种已在多种植物中获得成功。本实验室成功的进行了小麦与多种禾草的体细胞杂交,并在小麦与长穗偃麦草的对称与不对称体细胞杂交中分别获得了长穗偃麦草/小麦渐渗系和小麦/长穗偃麦草渐渗系。通过对小麦/长穗偃麦草渐渗系的筛选培养,从其后代中选育出一系列耐盐、耐旱新品种和高产、优质的小麦新品系。对小麦体细胞杂交机制进行深入研究将有助于体细胞杂交技术在小麦育种中的应用,但是目前尚无相关报道。本实验对小麦体细胞杂交早期供体染色质消减与渐渗机制进行了系统的研究,阐明了小麦体细胞杂种中供体染色质消减的时期及方式,探讨了供体与小麦亲缘关系及射线剂量对小麦体细胞杂种中供体染色质消减和渐渗的影响;通过混合小麦与两种不同亲缘关系供体的对称体细胞杂交,首次获得了小麦与早熟禾的体细胞杂种,揭示了小麦杂种的植株再生与亲本染色质互补现象,并探讨了组织培养及杂交过程中的甲基化模式变化。此外,通过对小麦与长穗偃麦草的偏草型杂种及后代的分析,阐明了杂种小麦染色体的存在方式;探讨了杂种中小麦染色体的消减现象。主要研究结果如下:1小麦体细胞杂交早期杂种细胞中供体染色质的消减方式小麦与四种禾草(长穗偃麦草Agropyron elongatum(Host)Neviski、簇毛麦Haynaldia villosa L.、早熟禾Poa annua L.、玉米Zea mays L.)体细胞杂交早期融合材料的GISH分析表明:杂种中供体染色质主要以微核的形式在细胞间期发生消减,同时还存在少量其它的消减方式,如有丝分裂后期形成微核、多核体中形成微核以及双亲核分离等现象。此外,在簇毛麦的体细胞杂种中发现供体染色质以落后染色体及染色体桥的形式存在。分析发现双亲核分离的现象主要出现在小麦与远缘禾草早熟禾和玉米的杂交组合5-7天的材料中,而在近缘禾草与小麦的杂交中很少出现,表明亲缘关系对小麦体细胞杂交中供体染色质的消减具有明显的影响。2小麦体细胞杂交早期杂种细胞中供体染色质消减与渐渗发生的主要时期小麦与簇毛麦及早熟禾γ-ray不对称体细胞杂交分析发现:杂交后5—7天供体染色质的消减率与渐渗率明显高于杂交后30天;融合后30天供体染色质的消减率与渐渗率均低于10%。由此可见,小麦体细胞杂交过程中供体染色质消减与渐渗主要发生在杂交后30天以内,尤其是杂交后5—7天。此外,在小麦与四种禾草的对称与UV不对称体细胞杂交中,杂交后5—7天供体染色质的渐渗率与消减率均明显高于12—15天,这进一步表明小麦体细胞杂交中供体染色质的消减与渐渗主要发生在杂交早期。3供体与小麦的亲缘关系对小麦体细胞杂交早期杂种细胞中供体染色质消减与渐渗的影响通过对小麦与近缘禾草长穗偃麦草、簇毛麦以及远缘禾草早熟禾、玉米的对称与不对称体细胞杂交(UV 1min和UV 2min)的比较分析发现,供体与小麦的亲缘关系对供体染色质的渐渗率具有非常明显的影响。亲缘关系近,则杂种中供体染色质的渐渗率高;亲缘关系远,则杂种中供体染色质的渐渗率低。此外,供体与小麦的亲缘关系与杂种中供体染色质的消减率的变化也具有一定的规律性:亲缘关系近,则杂种中供体染色质的消减率低;亲缘关系远,则杂种中供体染色质的消减率高。但是在长穗偃麦草的组合中供体染色质的消减率均很高,如UV1min的剂量组合中,5—7天的消减率为50.4%,12—15天的为37.2%,明显高于簇毛麦的消减率(37.0%和22.7%)。这表明:近缘供体的倍性及染色体组的大小也可以影响小麦体细胞杂交中供体染色质的消减率。4射线剂量对小麦体细胞杂交早期杂种细胞中供体染色质的消减与渐渗的影响通过对小麦与四种禾草不对称体细胞杂交中供体染色质消减与渐渗的比较分析表明:小麦体细胞杂交中供体染色质的消减与渐渗受射线剂量的影响。在一定的剂量范围内,供体染色质的渐渗率随着射线剂量的增加而升高,供体染色质的消减率随射线剂量的增加而降低。当射线剂量超出一定范围时,如早熟禾γ-ray不对称杂交10000rad剂量组合中,随着射线剂量的增加,供体染色质的渐渗率明显降低,而消减率大幅升高。5供体与小麦的亲缘关系对混合小麦体细胞杂种不对称程度的影响混合小麦(cha9和176)与簇毛麦及早熟禾的对称体细胞杂交获得了不对称程度不同的体细胞杂种,并再生大量杂种植株。对两个组合体细胞杂种的GISH分析表明:小麦/簇毛麦体细胞杂种中,簇毛麦染色体主要以整条的形式存在,同时有1-2个簇毛麦染色体片段;而小麦/早熟禾的体细胞杂种中,没有发现早熟禾的整条染色体,其染色质呈点状散布在杂种染色体上。小麦/早熟禾体细胞杂种的不对称性远远高于小麦/簇毛麦体细胞杂种。由此可见,供体与小麦亲缘关系越远,小麦体细胞杂种的不对称程度越高。6体细胞杂种再生与亲本染色质的互补以含有18S-5.8S-26SrDNA特异序列的pTa71质粒为探针,对同一基因型的愈伤组织(济南177)和悬浮细胞系(cha 9)混合小麦亲本及体细胞杂种进行了FISH分析。首次发现了混合小麦中不同的NORs区:cha9保留了亲本小麦中5条染色体上的5个信号,而176仅保留了2条染色体上的2个信号;cha9和176各自含有小麦济南177所没有的特异NORs区信号。在早熟禾杂种16H中检测到混合小麦各自特异的NORs区信号,直观的揭示了混合小麦在杂种染色体组成上的互补现象。通过对杂种NORs区信号及杂种表型的分析表明杂种存在明显的混合小麦再生互补现象。核基因组SSR分析也证实了这一点。混合小麦及早熟禾体细胞杂种4H的MSAP分析发现,经过长期的继代培养,混合小麦发生了大量的甲基化模式改变,有大量位点发生甲基化。杂种植株再生过程中也有甲基化模式的改变,但明显低于混合小麦。表明甲基化模式变化与组织培养的时间有关。杂种4H愈伤组织与cha9和176相比,甲基化模式变化明显不同。与小麦177相比,杂种植株再生时,体细胞杂种中甲基化模式变化得到了明显的恢复,包括5.88%的甲基化位点和3.35%的去甲基化位点,表明体细胞杂交中的再生互补与表观遗传变化相关。7对称体细胞杂交中小麦染色体的消减与渐渗染色体分析发现小麦与长穗偃麦草偏草型体细胞杂种染色体数目与长穗偃麦草类似,对R0粗杂种植株部分PMC的GISH及FISH分析发现:小麦染色体在减数分裂末期Ⅰ时,明显滞后,停留在赤道板上,与长穗偃麦草分离:R2代PMC中仅检测到3-5个小麦染色体小片段。这表明小麦染色体在杂种进入有性世代或减数分裂过程中大量消减,并在消减的过程中与长穗偃麦草染色体发生重组,最终以染色体小片段的方式渐渗进杂种中。对小麦与长穗偃麦草偏草型体细胞杂种的AFLP分析发现,在R2代杂种中,绝大多数小麦的基因组发生消减,在两个杂种中仅检测到13条小麦特异条带,其中9条在杂种中共存,1条仅在粗系杂种存在,其余3条仅在细系杂种中存在;两个杂种中长穗偃麦草基因组消减频率分别为9.8%及13.4%。此外,在两个杂种中还检测到19条新带,其中三条仅在细系杂种中出现。这表明体细胞杂种中双亲基因组均发生了消减,同时伴随着基因组的重排。对双亲及R1-R3代部分杂种种子进行的HMW-GS分析发现,杂种后代的HMW-GS带型主要偏向长穗偃麦草,杂种中有三个长穗偃麦草的HMW-GS丢失,同时有三个新的HMW-GS出现,表明体细胞杂种的HMW-GS发生了明显变化。

论文目录

  • 中文摘要
  • ABSTRACT
  • 符号说明
  • 第一章 文献综述
  • 1.1 植物体细胞杂交研究
  • 1.1.1 植物体细胞杂交的方式及方法
  • 1.1.2 体细胞杂种的鉴定及分析方法
  • 1.1.2.1 形态学标记
  • 1.1.2.2 细胞学标记
  • 1.1.2.3 同工酶标记
  • 1.1.2.4 原位杂交分析
  • 1.1.2.5 分子生物学标记
  • 1.1.3 体细胞杂交在植物育种中的研究进展
  • 1.1.4 植物体细胞杂交育种的遗传及分子基础研究
  • 1.1.4.1 杂种染色体行为及遗传稳定性的研究
  • 1.1.4.2 杂种胞质雄性不育(CMS)的研究
  • 1.1.4.3 杂种核基因结构分析
  • 1.1.4.4 杂种胞质基因组组成的研究
  • 1.2 染色质消减与渐渗研究
  • 1.2.1 植物有性杂交过程中的染色质消减
  • 1.2.2 植物有性杂交中的外源染色质的渐渗
  • 1.2.3 哺乳动物的染色体消减与渐渗
  • 1.2.4 鱼类的染色体消减与渐渗
  • 1.3 多倍化植物的基因组变异及表观遗传学变化
  • 1.3.1 植物杂交及多倍化中的基因组变异
  • 1.3.2 植物杂交及多倍化中的基因表达模式的改变
  • 1.3.3 植物有性杂交及无性系培养中DNA甲基化模式改变
  • 1.4 本研究目的和意义
  • 第二章 小麦体细胞杂交早期外源染色质消减与渐渗研究
  • 前言
  • 2.1 材料与方法
  • 2.1.1 培养基及各种溶液
  • 2.1.2 材料
  • 2.1.3 材料来源
  • 2.1.4 射线处理
  • 2.1.5 原生质体游离及融合
  • 2.1.6 融合材料制片观察
  • 2.1.7 DNA提取与纯化
  • 2.1.8 GISH分析
  • 2.2 结果与分析
  • 2.2.1 小麦与四种亲缘关系不同的禾草原生质体观察
  • 2.2.2 小麦与四种禾草体细胞杂交不同时期融合材料的细胞学观察
  • 2.2.3 小麦与簇毛麦及早熟禾γ射线不对称体细胞杂交后不同时期融合材料中供体染色质消减与渐渗的GISH分析结果
  • 2.2.3.1 小麦与簇毛麦γ射线不对称体细胞杂交的GISH分析结果
  • 2.2.3.2 小麦与早熟禾γ射线不对称体细胞杂交的GISH分析结果
  • 2.2.3.3 小麦与簇毛麦及早熟禾γ射线不对称体细胞杂交GISH结果的比较分析
  • 2.2.4 小麦与四种禾草对称及UV射线处理不对称体细胞杂交中供体染色质消减及渐渗的GISH结果分析
  • 2.2.5 小麦与四种禾草体细胞杂交早期杂种细胞中供体染色质消减与渐渗的GISH结果比较分析
  • 2.2.5.1 小麦体细胞杂交中供体染色质的消减方式
  • 2.2.5.2 小麦体细胞杂交过程中供体染色质消减与渐渗发生的主要时期
  • 2.2.5.3 供体与小麦的亲缘关系对小麦体细胞杂交中供体染色质消减与渐渗的影响
  • 2.2.5.4 射线剂量对小麦体细胞杂交中供体染色质的消减与渐渗的影响
  • 2.3 讨论
  • 2.3.1 小麦体细胞杂交早期杂种细胞中供体染色质消减与渐渗发生的主要时期
  • 2.3.2 小麦体细胞杂交早期杂种细胞中供体染色质的消减方式
  • 2.3.3 供体与小麦的亲缘关系对小麦体细胞杂交早期杂种细胞中供体染色质消减与渐渗的影响
  • 2.3.4 射线剂量对小麦体细胞杂交早期杂种细胞中供体染色质的消减与渐渗的影响
  • 第三章 混合小麦与两种不同亲缘关系禾草对称体细胞杂交研究
  • 前言
  • 3.1 材料与方法
  • 3.1.1 培养基及各种溶液
  • 3.1.2 材料
  • 3.1.3 材料来源
  • 3.1.4 原生质体游离及融合
  • 3.1.5 再生愈伤组织的培养及植株再生
  • 3.1.6 愈伤组织及再生植株的鉴定
  • 3.1.6.1 同工酶分析
  • 3.1.6.2 染色体分析
  • 3.1.6.3 荧光原位杂交分析
  • 3.1.6.4 RAPD分析
  • 3.1.6.5 SSR分析
  • 3.1.6.6 基因组MSAP分析
  • 3.2 结果与分析
  • 3.2.1 融合产物的培养与植株再生
  • 3.2.2 再生愈伤组织及植株形态
  • 3.2.3 融合再生杂种克隆的筛选
  • 3.2.3.1 同工酶分析结果
  • 3.2.3.2 RAPD分析结果
  • 3.2.4 亲本、部分杂种愈伤组织及再生植株的染色体分析结果
  • 3.2.4.1 早熟禾体细胞杂种染色体统计结果
  • 3.2.4.2 簇毛麦体细胞杂种染色体统计
  • 3.2.5 荧光原位杂交分析结果
  • 3.2.5.1 GISH分析结果
  • 3.2.5.2 FISH分析结果
  • 3.2.6 叶绿体基因组及核基因组SSR分析
  • 3.2.6.1 体细胞杂种叶绿体基因组的SSR分析
  • 3.2.6.2 核基因组的SSR分析
  • 3.2.7 MSAP分析结果
  • 3.3 讨论
  • 3.3.1 混合小麦与簇毛麦及早熟禾对称体细胞杂交获得绿色杂种植株
  • 3.3.2 供体与小麦亲缘关系对体细胞杂种不对称程度的影响
  • 3.3.3 混合小麦NORs鉴定及其在杂种中的再生互补现象
  • 3.3.4 双亲及杂种中甲基化模式变化
  • 第四章 小麦与长穗偃麦草偏草型体细胞杂种的遗传与外遗传变化研究
  • 前言
  • 4.1 材料与方法
  • 4.1.1 实验材料
  • 4.1.2 染色体分析
  • 4.1.3 荧光原位杂交分析
  • 4.1.4 DNA提取与纯化
  • 4.1.6 基因组AFLP分析
  • 4.1.7 种子蛋白的提取
  • 4.1.8 SDS-PAGE分析
  • 4.2 结果及分析
  • 4.2.1 小麦与长穗偃麦草体细胞杂种后代表型分析
  • 4.2.2 杂种后代染色体分析结果
  • 4.2.3 杂种后代花粉母细胞的GISH结果及分析。
  • 4.2.4 杂种后代植株的叶绿体SSR分析
  • 4.2.5 杂种后代植株的AFLP分析
  • 4.2.6 杂种后代种子中高分子量麦谷蛋白亚基分析
  • 4.3 讨论
  • 4.3.1 小麦与长穗偃麦草体细胞杂种中染色体消减与渐渗
  • 4.3.2 小麦与长穗偃麦草体细胞杂种中双亲基因组变化
  • 4.3.3 小麦与长穗偃麦草体细胞杂种HWM-GS变化
  • 总结
  • 参考文献
  • 致谢
  • 研究生期间发表论文及获奖情况
  • 学位论文评阅及答辩情况表
  • 附件
  • 相关论文文献

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