慢病毒介导GDNF在BMSCs中的表达及其对乳胞素所致帕金森病模型的保护作用

慢病毒介导GDNF在BMSCs中的表达及其对乳胞素所致帕金森病模型的保护作用

论文摘要

帕金森病(Parkinson’s disease,PD)是发病率仅次于阿尔采默病的神经系统变性病,其发病机制至今尚不明确。帕金森病以黑质细胞脱失,残存的黑质细胞胞浆内出现Lewy小体为特征性病理损害。Lewy小体形成可能与黑质细胞泛素—蛋白酶体(Ubiquitin-Proteasome System,UPS)功能减退,削弱了对α-synuclein等胞内蛋白的降解与清除有关。在帕金森病患者黑质发现有蛋白酶体功能减退;蛋白酶体相关酶类的基因突变可以引起家族性帕金森病。这些结果都提示蛋白酶体功能减退参与了帕金森病的发病。乳胞素(Lactacystin)是链酶菌素的代谢物,对蛋白酶体的20S颗粒有选择性、不可逆抑制作用。本课题组已建立Lactacystin所致的帕金森病偏侧大鼠模型。在此基础上,我们继续探讨如何减轻蛋白酶功能减退引起的多巴胺能神经元损伤。我们以Lactacystin干预PC12细胞和立体定向注射大鼠右侧内侧前脑束(Middle Forebrain Bundle,MFB)为模型,研究过表达胶质细胞源性营养因子(Glial-cell Derived Neurotrophic Factor,GDNF)的骨髓基质细胞(Bone Marrow Stromal Cells,BMSCs)的保护作用。第一部分GDNF慢病毒表达载体的构建及病毒的生产目的建立GDNF慢病毒表达质粒,并在293FT细胞中合成和收获病毒,同时测定病毒滴度。材料与方法:以pCDNA-GDNF为模板,设计含酶切位点的上下游引物,将扩增的PCR产物和pLenti6/V5-LacZ进行BamH I,Xho I双酶切,将酶切产物以T4连接酶连接。转化后挑选正确的克隆酶切鉴定,经测序证实表达载体构建正确。以脂质体转染法将GDNF和包装质粒共同转染293FT(以LacZ表达质粒为阳性对照),72h后收获病毒离心过滤,最后超速离心将沉淀重悬得到病毒储存液。以BMSCs测定病毒滴度。结果:经酶切和测序鉴定,pLenti6╱V5-GDNF序列正确,与病毒标志肽段V5融合表达。经293FT细胞包装后收获了病毒储存液,病毒滴度分别为GDNF(5.6×105TU/ml),LacZ(4.3×105TU/ml)。结论:成功构建了GDNF慢病毒表达质粒,并生产了具有感染能力的病毒储存液。第二部分慢病毒介导GDNF在BMSCs中的表达及其对Lactacystin引起PC12细胞损伤的保护作用目的:将携带GDNF基因的慢病毒转导至BMSCs,检测其过表达水平,并探讨过表达GDNF能否保护蛋白酶抑制剂(Lactacystin)引起PC12细胞的损伤。材料与方法:携带GDNF的慢病毒以MOI=1感染BMSCs后,利用RT-PCR、ELISA和免疫细胞化学方法检测GDNF的表达水平。利用MTT法检测GDNF-BMSC细胞培养上清预处理PC12能否减轻Lactacystin引起的损伤。结果:GDNF-BMSCs经RT-PCR和免疫细胞化学证实有外源性GDNF表达,且感染率达95%以上。ELISA检测显示感染病毒后24h开始,上清中GDNF含量较BMSCs组显著增高(P值<0.001),72h达到800pg/ml。GDNF-BMSCs培养上清对Lactacystin(10μm)引起的PC12的损伤有保护作用(P值=0.0004)。结论:慢病毒介导的GDNF能高效感染骨髓基质细胞,分泌具有生物学活性的GDNF,减轻Lactacystin引起的PC12细胞损伤。第三部分GDNF-BMSCs基因工程细胞移植治疗Lactacystin所致偏侧PD大鼠模型的模型目的:探讨预移植GDNF-BMSCs基因工程细胞对Lactacystin所致偏侧PD大鼠模型的保护作用。材料与方法:取雌性SD大鼠64只,随机分为对照组、lactacystin组、LacZ-BMSCs移植组(LacZ组)和GDNF-BMSCs组(GDNF组)。LacZ组和GDNF组于右侧纹状体四点注射2×105个基因工程细胞,对照组和lactacystin组注射0.01M PBS(20μl),细胞移植1周后,在lactacystin组和LacZ组、GDNF组大鼠右侧MFB立体定向注射lactacystin 2μg,NS组注射等量的生理盐水。观察大鼠行为变化、黑质致密区(SNc)TH阳性细胞数、纹状体TH阳性纤维灰度、黑质TH免疫印迹、以及纹状体区多巴胺含量。结果:GDNF组和LacZ组大鼠阿朴吗啡诱导的旋转次数显著低于Lactacystin组(P<0.05)。GDNF组和LacZ组纹状体TH阳性纤维和SNc区TH阳性神经元显著高于Lactacystin组(P<0.05),GDNF组SNc区TH阳性神经元高于LacZ组(P值<0.05)。免疫印迹结果显示,lactacystin组右侧TH表达显著低于左侧,而GDNF组无显著变化(P=0.361),LacZ组有明显减低(P<0.05),但仍高于Lactacystin组(P=0.023)。GDNF组(25.53±16.18 pmol/mg总蛋白,P=0.0016)和LacZ组(20.71±17.78 pmol/mg总蛋白,P=0.025)右侧纹状体多巴胺含量显著高于Lactacystin组(1.01±1.29 pmol/mg总蛋白)。结论:GDNF-BMSCs和LacZ-BMSCs工程细胞移植能减轻Lactacystin引起的中脑黑质多巴胺能神经元的损伤,GDNF-BMSCs的保护作用优于LacZ-BMSCs。结论1.构建了GDNF慢病毒表达载体,经293FT细胞包装生产了具有感染能力的病毒颗粒。2.GDNF慢病毒感染骨髓基质细胞后过表达,分泌至上清中的GDNF达到800pg/ml。该上清能减轻蛋白酶抑制剂Lactacystin引起的PCI2细胞的损伤,具有神经保护作用。3.经MFB局部立体定向注射2μg Lactacystin,可以引起黑质多巴胺能神经元的损伤。4.LacZ-BMSCs和GDNF-BMSCs纹状体移植能减轻Lactacystin所致黑质多巴胺能神经元的损伤,GDNF-BMSCs疗效优于LacZ-BMSCs组。

论文目录

  • 中文摘要
  • 英文摘要
  • 前言
  • 参考文献
  • 第一部分 GDNF慢病毒表达载体的构建及病毒的生产
  • 材料
  • 实验方法
  • 结果
  • 讨论
  • 小结
  • 参考文献
  • 第二部分 慢病毒介导的GDNF在BMSCs中的表达及其对Lactacystin引起PC12细胞毒性的保护作用
  • 材料
  • 实验方法
  • 结果
  • 讨论
  • 小结
  • 参考文献
  • 第三部分 基因工程细胞移植治疗偏侧lactacystin-帕金森大鼠模型
  • 实验材料
  • 实验方法
  • 结果
  • 讨论
  • 小结
  • 参考文献
  • 全文小结
  • 综述
  • 致谢
  • 发表论文
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    • [4].低强度脉冲超声促进BMSCs定向分化对兔软骨缺损影响研究[J]. 社区医学杂志 2020(12)
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    • [6].崂山奶山羊胎儿骨髓间充质干细胞(BMSCs)的分离培养及成神经诱导分化[J]. 畜牧与饲料科学 2016(09)
    • [7].BMSCs对大鼠放射性皮肤损伤的治疗研究[J]. 实验动物科学 2014(02)
    • [8].持续及周期流体静压力对大鼠BMSCs增殖及凋亡的影响[J]. 中国美容医学 2014(13)
    • [9].BMSCs对猪胰岛缺氧再给氧损伤的保护作用[J]. 中国修复重建外科杂志 2013(08)
    • [10].金匮肾气丸含药血清对体外兔BMSCs增殖细胞周期及凋亡的影响[J]. 辽宁中医杂志 2011(08)
    • [11].虎潜丸对骨髓基质干细胞BMSCs增长分化的影响[J]. 世界最新医学信息文摘 2016(83)
    • [12].基因修饰人BMSCs构建组织工程骨的实验研究[J]. 中国修复重建外科杂志 2016(12)
    • [13].补肾活血方对激素性股骨头坏死大鼠BMSCs分化影响的研究[J]. 中西医结合研究 2012(06)
    • [14].兔激素性股骨头缺血性坏死模型BMSCs超微结构观察[J]. 山东医药 2011(19)
    • [15].以BMSCs为基础构建组织工程骨修复种植区骨量不足的实验研究[J]. 武警医学 2015(09)
    • [16].BMSCs作用于肝纤维化的分子机制研究[J]. 中国医药导报 2013(04)
    • [17].不同补肾法对BMSCs向神经元样细胞分化的影响[J]. 中国中医眼科杂志 2013(04)
    • [18].非接触性共培养BMSCs和髓核细胞时间差异性的实验研究[J]. 中国修复重建外科杂志 2012(11)
    • [19].长时间不同强度负压对兔BMSCs成骨分化及增殖的影响研究[J]. 中国修复重建外科杂志 2017(05)
    • [20].经血管周围移植BMSCs抑制腹主动脉瘤生长[J]. 东南大学学报(医学版) 2016(03)
    • [21].自体BMSCs诱导胰岛素分泌细胞治疗糖尿病大鼠疗效研究[J]. 内蒙古医学杂志 2020(10)
    • [22].泮托拉唑通过一氧化氮通路促进BMSCs增殖及向成骨细胞定向分化[J]. 中国骨质疏松杂志 2014(04)
    • [23].慢病毒介导人肝细胞生长因子基因感染BMSCs的实验研究[J]. 中国修复重建外科杂志 2010(08)
    • [24].地黄饮子孵育BMSCs移植对大鼠脑梗塞HSP70和VEGF表达的影响[J]. 时珍国医国药 2010(11)
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    • [30].间歇性负压培养对人BMSCs骨保护素和骨保护素配体mRNA表达水平的影响[J]. 中国修复重建外科杂志 2008(11)

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