利用密码子偏好性对大肠杆菌异源蛋白进行可控表达

利用密码子偏好性对大肠杆菌异源蛋白进行可控表达

论文摘要

大肠杆菌由于其遗传背景清楚,表达周期短,有大量的可用表达载体,能够进行大规模的发酵培养,而成为人们克隆和表达外源蛋白的首选。然而,大肠杆菌在作为异源蛋白的表达系统时,由于翻译速度太快,表达量过高,容易形成包涵体,这往往会带来非常严重的负面效应;并且,在大肠杆菌代谢工程研究中,需要将代谢途径中的中间酶的表达水平控制在一定范围内,实现整个途径多基因的联合协同表达。尽管,目前人们已经有很多成熟的调控基因表达的系统,但是能达到代谢工程要求的精确调控系统还比较少。本研究利用稀有密码子,通过降低翻译速度来降低蛋白表达量,筛选得到一套可按不同梯度下调蛋白表达量的密码子调控元件,并且应用到代谢工程研究中。研究结果如下:1以酿酒酵母无机焦磷酸酶为研究对象,在pET表达系统下,通过加入两个和四个稀有密码子,下调了蛋白表达。将同样的质粒转入Rosetta,补充了稀有密码子对应的tRNA,表达得到回复。初步验证了,稀有密码子可以下调蛋白表达的概念。2在OR、RR、RRRR结果基础上对调控元件进行DpnI点突变,筛选并验证了一系列的密码子调控元件,进行相对活性分析,蛋白表达由高到低依次为OR (100.00)、RGGR(75.50)、RS (70.61)、RGRG (56.35)、RR (42.99)、 RRSR (30.37)、RRGR (22.36)、RRRG (4.39)、RRRS (2.91)、RRRR(0),共计9个,呈逐渐下调趋势,可在较大范围内下调蛋白的表达。将OR、RR、RRRR由ATG后的+21位前移到+2,差异依然存在。3将部分密码子调控元件RR、RRRR、RRRS、RRRG,应用到pBAD表达系统,得到了与在pET系统下相近的结果,但部分元件的下调幅度有削减,其中RR的相对活性由42.99变为68.57,RRRS的相对活性由2.91变为51.74,RRRG的相对活性由4.39变为57.28。4在蛋白表达形式多为包涵体的BglA前加入筛选的密码子调控元件,总蛋白表达均有不同程度的下调,可溶性蛋白表达由高到低依次为SS(141.15)、G2G2 (139.40)、G1G1 (132.17)、OR (100.00)、RR (65.09)、RRSR (37.66)、RRGR (20.59),其中,SS和G2G2两个样品比原始蛋白的可溶性提高了1.4倍,且总蛋白没有增加。5对MEP途径改造过程中,加入密码子调控元件的IspG表达量均有不同程度的下调,不同的表达水平对应的neurosporene的产量也有所不同。RRRR-IspG的表达水平下,neurosporene可以取得最高的产量。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 第一章 前言
  • 1 大肠杆菌表达系统的组成
  • 1.1 表达载体
  • 1.1.1 启动子
  • 1.1.2 SD序列
  • 1.1.3 转录终止子
  • 1.2 外源基因结构
  • 1.3 表达宿主菌
  • 2 大肠杆菌表达系统存在的一些问题
  • 3 影响外源基因表达的因素
  • 3.1 转录水平因素对外源基因表达的影响
  • 3.2 翻译水平因素对外源基因表达的影响
  • 4 密码子偏好性对蛋白表达的影响
  • 4.1 密码子偏好性
  • 4.2 稀有密码子对蛋白表达的影响
  • 5 本研究的目的、意义及主要内容
  • 第二章 材料与方法
  • 1 焦磷酸酶的克隆表达及稀有密码子对其表达的影响
  • 1.1 材料、仪器与试剂
  • 1.1.1 实验材料
  • 1.1.2 主要仪器
  • 1.1.3 培养基和溶液
  • 1.1.4 生化试剂
  • 1.2 方法与步骤
  • 1.2.1 引物设计
  • 1.2.2 酵母基因组DNA的提取
  • 1.2.3 稀有密码子系列无机焦磷酸酶基因扩增
  • 1.2.4 DNA产物纯化试剂盒纯化PCR产物
  • 1.2.5 质粒的提取
  • 1.2.6 质粒pET-28a(+)和目的片段的双酶切
  • 1.2.7 普通DNA凝胶回收试剂盒回收目的片段
  • 1.2.8 原核表达载体pET-28a(+)与目的片段连接
  • 1.2.9 大肠杆菌DH5α化转感受态细胞的制备
  • 1.2.10 连接产物的转化
  • 1.2.11 阳性克隆子的筛选与鉴定
  • 1.2.12 重组质粒转化至表达宿主菌
  • 1.2.13 表达蛋白的SDS-PAGE分析
  • 2 定点突变筛选不同密码子调控元件下调蛋白表达
  • 2.1 材料、仪器与试剂
  • 2.1.1 实验材料
  • 2.1.2 主要仪器
  • 2.1.3 培养基和溶液
  • 2.2 方法与步骤
  • 2.2.1 突变位点的确定
  • 2.2.2 突变方法
  • 2.2.3 突变引物设计
  • 2.2.4 PCR扩增质粒进行点突变
  • 2.2.5 无机焦磷酸酶相对活性分析
  • 3 密码子调控元件在不同位置以及不同表达系统对蛋白表达的影响
  • 3.1 材料、仪器与试剂
  • 3.1.1 实验材料
  • 3.1.2 主要仪器
  • 3.1.3 培养基和溶液
  • 3.2 方法与步骤
  • 3.2.1 引物设计
  • 3.2.2 稀有密码子系列无机焦磷酸酶基因扩增
  • 4 密码子调控元件在不同蛋白及代谢途经改造上的应用
  • 4.1 材料、仪器与试剂
  • 4.1.1 实验材料
  • 4.1.2 主要仪器
  • 4.1.3 培养基和溶液
  • 4.2 方法与步骤
  • 4.2.1 引物设计
  • 4.2.2 细菌基因组DNA的提取
  • 4.2.3 β-葡萄糖苷酶的扩增
  • 4.2.4 β-葡萄糖苷酶的相对活性测定
  • 4.2.5 IspG的扩增
  • 4.2.6 Neurosporene产量检测方法
  • 第三章 结果与分析
  • 1 不同数量的稀有密码子R(精氨酸)对蛋白表达的影响
  • 1.1 不同数量R系列无机焦磷酸酶(PPA)基因的扩增
  • 1.2 R密码子系列无机焦磷酸酶原核表达载体的构建
  • 1.3 稀有密码子对无机焦磷酸酶蛋白表达的影响
  • 1.4 R密码子系列无机焦磷酸酶在Rosetta(DE3)中进行表达
  • 2 利用DPN Ⅰ定点突变法获得不同的密码子调控元件
  • 2.1 定点突变无机焦磷酸酶基因的扩增及测序鉴定
  • 2.2 不同的密码子调控元件对无机焦磷酸酶蛋白表达的影响
  • 2.3 不同的密码子调控元件下无机焦磷酸酶的相对活性分析
  • 2.3.1 无机焦磷酸酶反应初速率时间范围的确定
  • 2.3.2 无机焦磷酸酶的相对活性分析
  • 2.3.3 不同的密码子调控元件载体在Rosetta中蛋白表达
  • 3 不同位置密码子对无机焦磷酸酶表达的影响
  • 3.1 密码子系列无机焦磷酸酶原核表达载体的构建
  • 3.2 pET-21a(+)密码子系列无机焦磷酸酶的表达分析
  • 4 PBAD表达系统下密码子调控元件对无机焦磷酸酶表达的影响
  • 4.1 pBAD系统下不同密码子系列无机焦磷酸酶的扩增
  • 4.2 pBAD系统下不同密码子系列无机焦磷酸酶原核表达载体的构建
  • 4.3 pBAD表达系统下不同密码子无机焦磷酸酶的表达分析
  • 4.4 pBAD表达系统下不同密码子无机焦磷酸酶的相对活性分析
  • 5 不同的蛋白(B-葡萄糖苷酶)在密码子调控元件下的表达情况
  • 5.1 不同密码子系列β-葡萄糖苷酶PCR扩增
  • 5.2 不同密码子系列β-葡萄糖苷酶原核表达载体的构建
  • 5.3 不同密码子调控元件下β-葡萄糖苷酶表达分析
  • 5.4 不同密码子调控元件下β-葡萄糖苷酶相对活性分析
  • 6 密码子调控元件在代谢途径改造上的应用
  • 6.1 不同密码子系列IspG的PCR扩增
  • 6.2 不同密码子系列IspG原核表达载体的构建
  • 6.3 不同表达水平IspG对MEP途径的影响
  • 7 讨论
  • 第四章 本研究的主要结论
  • 参考文献
  • 附录1 部分试剂药品配方
  • 附录2 缩略词
  • 致谢
  • 相关论文文献

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