TRPC通道参与U-87细胞缺氧诱导的VEGF表达的研究

TRPC通道参与U-87细胞缺氧诱导的VEGF表达的研究

论文摘要

研究背景恶性多形性神经胶质细胞瘤(Glioblastoma multiforme,GBM)是最常见的恶性脑部肿瘤。GBM患者通常预后很差,是癌症相关死亡的主要原因。这一类型肿瘤呈现高度血管依赖性。通常,神经胶质瘤恶性程度越高,则血管化程度越高。许多生长因子可以调节肿瘤血管生成,包括:成纤维细胞生长因子(Fibroblast growth factors,FGF),血管内皮生长因子(Vascular endothelia growthfactors,VEGF),内皮生长因子(Endothelial growth factors,EGF)和转化生长因子(Transforming growth factors,TGF-β)等。其中,VEGF是最重要的实体瘤血管生成因子。VEGF可促进血管内皮细胞增殖,导致血管生成。缺氧是GBM的显著特征,同时也是一个已知的可诱导VEGF表达的重要因素。人们发现,GBM坏死区周围存在高度缺氧的区域(pseudopalisading region),该区细胞表达高水平的VEGF。VEGF表达的调节是复杂的,涉及到多个不同的水平,包括:VEGF转录增加,VEGF mRNA的稳定,VEGF蛋白的分泌和扩散。在大多数细胞,缺氧诱导因子1α(Hypoxia inducible factor,HIF-1α)是调节VEGF表达的关键转录因子。缺氧情况下,HIF-1α蛋白增加且转录活性升高。它与HIF-1β形成异源二聚体,与VEGF启动子区结合,介导VEGF表达。通常,转录因子直接调控下游靶基因表达。然而,离子通道可能在更上游的水平发挥调节基因表达的作用。嗜铬细胞瘤细胞系(PC12)是一个公认的可兴奋的氧感受细胞;缺氧可以抑制氧敏感的钾离子通道(Kv1.2),细胞因此产生去极化;Kv1.2的失活过程密切耦联于HIF-1靶基因酪氨酸羟化酶(Tyrosinehydroxylase)的表达。此外,非选择性阳离子通道(non-selective cation channels)也参与缺氧信号转导通路。严重缺氧联合葡萄糖剥夺(prolonged oxygen andglucose deprivation)激活TRPM7-ROS正反馈通路,介导钙超载事件,引起神经元坏死。中等程度缺氧(1%)条件下,Yamaji等发现非选择性阳离子通道参与缺氧诱导的内皮细胞糖酵解甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)表达。缺氧暴露时,非选择性阳离子通道被激活,通透钙离子导致星形胶质细胞胞内钙浓度升高,而钙是重要的基因表达的调节者。非选择性离子通道包括很多成员:TRP通道(transient receptor potentialchannels),钙激活的非选择性通道(calcium activated non-selective channels),超极化激活的阳离子通道(hyperpolarization activated cation currents),酸感受离子通道(acid-sensitive cationic channels,ASIC)等等。其中TRP是近年来的研究热点。TRP离子通道超家族至少包括TRPC(TRP-canonical),TRPV(TRP-vanilloid)和TRPM(TRP-melastatin)亚家族。尽管以前的实验通过通道阻断剂La3+或者Gd3+证实非选择性阳离子通道参与细胞的缺氧反应性。但是这些通道阻断剂是非特异性的,可能对整个非选择性阳离子通道的成员都有作用(阻断或激活),因此无法确定参与缺氧反应的具体分子。本研究主要关注TRPC离子通道。TRPC通道是一个重要的TRP通道成员,可以感受多样性的外界刺激。人类细胞表达六个TRPC亚型(TRPC1-7),除了TRPC2(在人类是假基因)。通过联合使用药理学以及细胞分子生物学方法,我们确认了一个特异性的TRPC亚型,TRPC1,参与缺氧诱导的U-87细胞VEGF表达。目的本研究联合使用多种细胞生物学和分子生物学方法:MTT,hoechst染色,real-time RT-PCR,western blot,免疫荧光技术,RNA干扰,过表达,钙浓度测定方法等,探讨TRPC在缺氧诱导的U-87细胞VEGF表达中的作用。方法1.通过MTT、Hoechst、western blot和real-time RT-PCR方法,分析低氧(1%O2)不同时间点细胞凋亡、增殖、缺氧诱导因子1α(HIF-1α)以及VEGF表达情况,以建立神经胶质细胞瘤细胞系U-87体外缺氧诱导VEGF表达的模型。2.通过real-time RT-PCR,观察TRPC通道阻断剂SKF96365对缺氧诱导的VEGF表达的影响,以确定TRPC通道是否参与缺氧诱导的VEGF表达。3.采用RT-PCR,检测常氧情况下不同TRPC通道亚型在U-87细胞上的表达情况。4.使用激光共聚焦显微镜,观察加入TRPC通道激动剂OAG以及阻断剂2-APB时细胞内Ca2+的动态变化,以确定U-87细胞上的TRPC通道是否是功能性的。5.使用real-time RT-PCR,观察并分析缺氧后TRPC通道各亚型的表达情况,以确定下一步需要使用的分子生物学策略:过表达或RNA干扰。6.通过RNAi下调TRPC1表达。分别用real-time RT-PCR和ELISA检测VEGFmRNA和蛋白水平的变化,观察下调TRPC1对缺氧诱导的VEGF上调的影响。7.通过瞬时转染野生型TRPC3或TRPC5质粒增加TRPC3或TRPC5表达。观察TRPC3和TRPC5对缺氧诱导的VEGF表达的影响。8.通过免疫荧光技术,使用激光共聚焦显微镜观察缺氧是否引起TRPC1胞内转位变化。结果1.Hoechst结果显示:缺氧(1%O2)24h或48h不导致细胞凋亡;缺氧24h仅轻微减少了细胞增殖(下降3.23%),而缺氧48h细胞出现明显的增殖抑制(减少22.35%,P<0.001);缺氧(1%O2)诱导HIF-1α增加;缺氧10h显著诱导VEGF表达(升高4.24倍,P<0.01)。2.TRPC通道阻断剂SKF96365可明显抑制缺氧U-87细胞VEGF表达。25μMSKF96365抑制了VEGF mRNA水平的上调(P<0.01),且增加SKF96365的浓度进一步抑制VEGF表达。3.常氧条件下,PCR产物经琼脂糖凝胶电泳分析,检测到四个单一条带,大小为168bp,112bp,119bp,159bp(与预期的产物大小一致),分别对应于TRPC1,TRPC3,TRPC4和TRPC5亚型。4.TRPC通道激动剂OAG可增加胞内Ca2+浓度,而TRPC通道阻断剂2-APB可抑制激动剂诱导的胞内Ca2+浓度增加。5.缺氧后,U-87细胞TRPC3和TRPC4亚型表达分别减少67.7%,68.2%(P<0.05)。此外,高敏感的荧光定量PCR无法检测到缺氧U-87细胞TRPC5亚型转录本。另一方面,常氧和缺氧胶质瘤细胞TRPC1的表达保持稳定,并不发生明显减少。6.化学合成的siRNA显示出高度的细胞传输效率(超过90%);三个TRPC1特异性的siRNAs:siRNA-1,siRNA-2和siRNA-3分别减少TRPC1 mRNA到64%,39%和36%(P<0.01);分别减少TRPC1蛋白到阴性对照组的48%,29%和33%(P<0.01)。siRNA-2和siRNA-3显著抑制了缺氧诱导的VEGF基因上调(P<0.01)。同时培养基中分泌的VEGF也发生类似的变化(P<0.01)。7.通过瞬时过表达TRPC3或TRPC5增加了缺氧情况下U-87细胞TRPC3或TRPC5的表达水平。但过表达这些TRPC野生型质粒DNA既不促进缺氧U-87细胞VEGF表达,也不减弱VEGF表达(P>0.05)。8.常氧条件下,TRPC1通道分布于胞膜及胞浆。然而缺氧后,胞浆区TRPC1荧光明显减少,而细胞膜出现强烈的荧光信号。结论1.1%O2是人体内实体肿瘤低氧环境的氧气浓度。体外的缺氧实验证实该氧气浓度作用24h不能诱导显著的细胞凋亡且仅轻微抑制细胞增殖,但延长缺氧暴露时间至48h可导致细胞增殖抑制。说明1%O2作用小于24h可能是合适的体外诱导U-87细胞VEGF表达的模型。进一步,缺氧(1%O2)可增加HIF-1α蛋白水平,并显著诱导VEGF上调。2.TRPC通道阻断剂可抑制缺氧U-87细胞VEGF表达,说明TRPC通道可能参与缺氧诱导的VEGF表达。3.常氧条件下,U-87细胞共表达四个TRPC通道亚型,分别为:TRPC1,TRPC3,TRPC4和TRPC5。4.对TRPC通道激动剂和阻断剂的反应性,说明U-87细胞上TRPC通道是功能性的。5.缺氧后TRPC3,4,5亚型表达量显著减少,而TRPC1表达保持不变。说明相对于其他TRPC亚型,TRPC1可能在胶质瘤细胞缺氧信号通路中扮演不同的角色。并提示下一步针对缺氧抑制表达的TRPC亚型,可采用过表达方法;而针对TRPC1,则采用RNA干扰技术。6.通过RNAi下调TRPC1表达可抑制缺氧诱导的VEGF基因表达,此外,分泌型VEGF也受到抑制。说明TRPC1参与缺氧诱导的VEGF表达。7.过表达可显著增加TRPC3或TRPC5亚型表达。但过表达这些TRPC野生型质粒DNA既不促进缺氧U-87细胞VEGF表达,也不减弱VEGF表达。说明TRPC3或TRPC5不参与缺氧诱导的VEGF上调过程。8.缺氧诱导TRPC1细胞膜转位,说明缺氧条件下,TRPC1可能通过转位而被激活,参与缺氧诱导的VEGF表达。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 研究背景
  • 材料和方法
  • 结果
  • 讨论
  • 参考文献
  • 全文小结
  • 博士期间发表论文
  • 致谢
  • 统计学证明
  • 相关论文文献

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    • [2].线粒体源性过氧化氢增敏钙受体致缺氧诱导的胞浆钙增加[J]. 中国病理生理杂志 2010(10)
    • [3].骨桥蛋白反义寡核苷酸对体外微缺氧诱导的肿瘤新生血管的影响[J]. 中国现代医学杂志 2011(25)
    • [4].硫化氢抑制缺氧诱导的肺动脉平滑肌细胞增殖及迁移和促进凋亡的实验研究[J]. 心肺血管病杂志 2020(10)
    • [5].ERK/MAPK信号途径参与缺氧诱导MGr1-Ag/37LRP的表达及其在胃癌中抵抗凋亡的机制[J]. 医学争鸣 2010(04)
    • [6].Humanin对缺氧诱导的大鼠皮层神经元损伤的保护作用[J]. 中西医结合心脑血管病杂志 2010(02)
    • [7].牛磺酸抑制缺氧诱导大鼠肺动脉平滑肌细胞增殖及信号转导机制[J]. 中国中药杂志 2014(10)
    • [8].高效缺氧诱导表达载体的构建与鉴定[J]. 生物技术通讯 2008(02)
    • [9].miR-633通过调节蛋白激酶B影响缺氧诱导H9C2细胞生物学功能研究[J]. 临床军医杂志 2019(12)
    • [10].纳洛酮对缺氧诱导大鼠神经元损伤的抑制作用及其机制[J]. 苏州大学学报(医学版) 2012(06)
    • [11].萝卜硫素通过下调微小核糖酸-22改善缺氧诱导的心肌H9c2细胞凋亡[J]. 心肺血管病杂志 2020(03)
    • [12].层黏连蛋白受体参与缺氧诱导胃癌多药耐药的机制研究[J]. 现代肿瘤医学 2011(07)
    • [13].RNA干扰瞬时受体电位阳离子通道1表达抑制缺氧诱导的胶质瘤血管内皮生长因子上调的实验研究[J]. 中国医药导报 2013(16)
    • [14].缺氧诱导分化因子-1对小鼠主动脉平滑肌细胞增生作用的研究[J]. 重庆医学 2008(12)
    • [15].缺氧诱导血管内皮细胞损伤的机制研究[J]. 中国实验诊断学 2019(05)
    • [16].线粒体核周聚集为缺氧诱导的转录提供了一个富含氧化剂的核区[J]. 生理科学进展 2014(01)
    • [17].利用RNAi沉默KIAA0280后对缺氧诱导大鼠神经元凋亡的影响[J]. 广东药学院学报 2008(02)
    • [18].miR-130a对缺氧诱导的人肺动脉平滑肌细胞增殖的影响[J]. 郑州大学学报(医学版) 2019(06)
    • [19].蛋白酪氨酸磷酸酶2对肺动脉平滑肌细胞增殖的调控作用[J]. 宁夏医学杂志 2016(05)
    • [20].小鼠缺氧诱导丝裂原因子基因启动子的结构与功能分析[J]. 中国生物化学与分子生物学报 2008(08)
    • [21].缺氧诱导通路基因多态性与肺癌及临床特征的关联性研究[J]. 安徽医科大学学报 2020(01)
    • [22].硫化氢对缺氧诱导的大鼠皮层神经元损伤的保护作用[J]. 中国病理生理杂志 2014(02)
    • [23].JNK信号通路对缺氧诱导心房钠尿肽分泌的影响[J]. 延边大学医学学报 2013(04)
    • [24].右美托咪定对缺氧诱导人肝癌细胞增殖和血管生成的影响[J]. 中山大学学报(医学科学版) 2017(02)
    • [25].核因子κB通路参与缺氧诱导心肌细胞分泌肿瘤坏死因子α[J]. 临床心血管病杂志 2012(04)
    • [26].HSP70在化学性缺氧诱导毛细胞损伤中的作用[J]. 中国医药导报 2010(35)
    • [27].缺氧诱导的细胞外囊泡在肿瘤进展中的作用[J]. 现代肿瘤医学 2020(12)
    • [28].天冬多糖逆转缺氧诱导的上皮间质转换抑制人肝癌细胞迁移[J]. 辽宁中医杂志 2019(10)
    • [29].BAMBI过表达抑制缺氧诱导的恒河猴视网膜血管内皮细胞增殖和迁移[J]. 眼科新进展 2016(05)
    • [30].缺氧诱导肺损伤的病理机制研究进展[J]. 现代生物医学进展 2014(23)

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