人巨细胞病毒UL49 ORF表达及产物功能的初步研究

人巨细胞病毒UL49 ORF表达及产物功能的初步研究

论文摘要

背景与目的人巨细胞病毒UL49开放阅读框(ORF)为疱疹病毒保守基因。目前,除Walter Dunn等利用细菌人工重组染色质(BAC)技术发现UL49缺失突变病毒不能再包装,间接证实UL49为人巨细胞病毒生长的必须基因外,对UL49相应功能研究均局限于生物信息学分析与推测。为了进一步证实UL49在病毒生物学方面的功能,有必要首先阐明以下问题:UL49的mRNA表达及全长cDNA精确序列;能否检测到UL49编码的蛋白(pUL49)、确定pUL49表达时相及蛋白特性(病毒结构蛋白、还是非病毒结构蛋白?)等;在此基础上,对以下问题进行实验论证:pUL49在病毒感染宿主细胞中的定位以及在病毒感染、复制中的生物学功能;pUL49可能与宿主细胞哪些蛋白分子相互作用等。方法将HCMVA接种生长良好的人胚肺成纤维细胞(HELF),抽提病变细胞中的病毒RNA;以SMART RACE(Rapid Amplification of cDNA Ends, RACE)技术扩增UL49的5’和3’末端,TA克隆两类RACE产物,测序;用RT—PCR扩增UL49全长cDNA序列。获取Genebank公布的UL49编码氨基酸序列,用在线软件对其Hopp&Woods亲水性、可及性、极性及柔韧性、Welling抗原性和二级结构等参数法进行分析,用吴玉章等建立的B细胞表位预测法综合评价;以化学方法对预测片断进行多肽合成、纯化、与载体血兰蛋白(KLH)联接;将多肽-血兰蛋白化合物(免疫原)免疫新西兰大白兔,获得兔免疫血清后,用ELISA测定效价;构建HCMV UL49大片断(aa3-246)原核表达载体pGEX-4T-3-UL49A,诱导表达pUL49A-GST融合蛋白;构建HCMV UL49全基因真核表达载体pCDNA3.1-UL49-myc,瞬时表达pUL49-myc融合蛋白;以包装成功的HCMV-Towne病毒株感染HFF细胞,收集7天后的培养上清液,以anti-HCMV pUL49为一抗进行上述三种样本Western blotting实验。以RV-Towne感染HFF,收集3、6、12、24、48、72、96、120hr后细胞裂解液,以anti-HCMV pUL49、anti-IE (CMVpp72/86)、anti-E (CMVgB/CH28)、anti-LA (CMVpp28/CH19)分别对细胞裂解上清液进行WB;收集接近100%细胞病变的HFF[RV-Towne]培养上清液(病毒颗粒),于58750×g、4℃离心纯化病毒,分别用Triton X-100、Trypsin预处理并4℃、100000g离心,以可溶混合上清液、不溶蛋白部分分别进行Western blotting。用试剂盒抽提、纯化重组人巨细胞病毒Towne基因组(Towne-BAC)、delUL49 Towne基因组(delUL49 Towne-BAC),构建pcDNA3.1(+)-UL82表达质粒;将Towne-BAC、delUL49 Towne分别与pcDNA3.1 (+)-UL82共转HFF,将Towne-BAC、delUL49 Towne分别与pcDNA3.1 (+)-UL82、pcDNA3.1 (+)-UL49共转HFF,培养病毒、观察细胞病变;以RV-Towne感染HFF,收集3、6、12、24、48、72、96、120hr后细胞,分别用Hochest33258、anti-HCMVpUL49、anti-E、anti-LA进行细胞免疫影像实验,荧光显微镜下观察、影像合成定位分析;将纯化的重组病毒与anti-pUL49抗体经37℃预处理0.5hr后,以1 PFU/cell量感染HFF细胞,收集1-7天的病毒细胞上清夜,再观察其生长状况;将上述预处理RV-Towne以1 PFU/cell量感染HFF细胞,收集1、3、6hr的病毒感染细胞,抽提总染色质DNA,以连续稀释后的总染色质DNA为模板,PCR扩增RV-Towne特异基因IE1序列,半定量分析RV侵入细胞的量。扩增UL49全序列,克隆入pGBKT7,将pGBKT7-UL49转化到酵母细胞AH109,用蛋白印迹法分析诱饵蛋白的表达,检测诱饵蛋白有无毒性和自激活效应;将人胚肾细胞cDNA文库与pGBKT7-UL49共转AH109,于营养缺陷型培养基中筛选阳性克隆,按文献将阳性克隆酵母作β-半乳糖苷酶活性测定;将酵母质粒电转DH5α,抽提质粒,设计文库插入片段上游引物,对双杂交阳性且β-半乳糖苷酶阳性细菌质粒的AD插入片段进行PCR;将非重复克隆细菌质粒的AD插入片段PCR扩增产物进行HaeⅢ酶切,将非重复克隆质粒进行测序,通过Genebank同源性搜索和序列比对分析;选取同源性搜索和序列比对分析后的基因重复酵母双杂交及其β-半乳糖苷酶活性实验;扩增CYB5D2、C11ORF17、COL3A1、UCHL3因片断,构建其pGEX4T-3的表达质粒,构建pCDNA3.1(+)-UL49真核表达质粒;用IPTG诱导细菌表达CYB5D2、C11ORF17、COL3A1、UCHL3的GST融合蛋白,瞬时表达pUL49蛋白,按文献将pUL49分别与CYB5D2、C11ORF17、COL3A1、UCHL3的GST融合蛋白进行GST-pull down;构建pCDNA3.1(+)-COL3A1、pCDNA3.1(+)-C11ORF17真核表达质粒,分别瞬时转染HFF细胞,以1.0PFU/cell量感染上述两组细胞,收集感染1-7后的细胞培养上清夜进行病毒生长实验。结果HCMVA在体外成功感染HELF,感染的HELF中有HCMV的IE1和LA标志性基因;用SMART RACE技术从病毒RNA中获得UL49基因的5’和3’UTR,分别克隆后测序,UL49基因5’UTR长90bp、3’UTR长315bp;RT-PCR扩增获得2118bp的UL49基因全长cDNA序列,其开放读码框编码570个氨基酸。多种预测法重复了人巨细胞病毒pUL49蛋白的N端第228~243位氨基酸区域内或附近,该区域含有β转角和无规卷曲结构;化学方法合成得到了该区域氨基酸序列KRFDARADLAVY-KLH的免疫原;获得免疫兔血清,ELISA测定效价达1:8000以上;以此anti-HCMV pUL49为一抗得WB实验显示pUL49A-GST融合蛋白、pUL49A-myc融合蛋白、HFF[RV-Towne]细胞蛋白裂解液均显示蛋白条带,其分子量与理论值吻合。RV-Towne感染HFF在12hr后,pUL49开始出现表达,至RV-Towne感染96hr达峰值,与典型的HCMV时相基因pp72/86、gB、pp28的表达对照,类似gB蛋白时相;用细胞表面活性剂TX-100以及蛋白胰酶对纯化病毒进行不同处理后,pUL49与pp28的WB实验结果一致,而与gB存在明显差异。成功构建pcDNA3.1(+)一UL82.pcDNA3.1(+)-UL49;Towne-BAC与pcDNA3.1(+)-UL82共转15天后可见绿色荧光,delUL49 Towne-BAC与pcDNA3.1(+)-UL82共转30天后仍未见绿色荧光;Towne-BAC与pcDNA3.1(+)-UL82、pcDNA3.1(+)-UL49共转15天后也可见绿色荧光,delUL49 Towne-BAC与pcDNA3.1(+)-UL82共转20天后方见绿色荧光,至30天后荧光强度仍较Towne-BAC的结果相距甚远;病毒感染HFF细胞过程中,pUL49出现时间与蛋白表达出现时间一致,均出现于12hr,影像显示pUL49定位于细胞质而非细胞核,且在细胞感染24hr内显现均匀散布状,而后渐成聚集状,定位于核外边界某一点状区域、且量逐渐增多;以早期表达蛋白gB、晚期表达蛋白pp28为对照,pUL49与pp28在72、96hr存在共定位,而与gB虽然在24、72、96hr均出现表达影像,但未发现两者之间的共定位;经anti-pUL49预处理的重组病毒在感染前2天与未经处理的病毒出现近1个数量级的生长差异,两者在其后的差异均在1个数量级内,差异并不明显;anti-pUL49预处理的病毒在感染侵入阶段(1-6hr),RV-Towne特异基因IE1序列PCR扩增产物与未经anti-pUL49预处理的病毒差异不显著。克隆成功pGBKT7-UL49并成功转化到AH109,AH109[pGBKT7-UL49]表达诱饵蛋白pUL49,pUL49对转化细胞无细胞毒性、无自激活;酵母双杂交筛选得到30个SD/-Trp-Leu-His-Ade阳性且β-半乳糖苷酶阳性克隆,PCR、HaeⅢ酶切鉴定结果显示11个非重复克隆质粒;其中4个基因重复酵母双杂交及其β-半乳糖苷酶活性,显示C11ORF17、COL3A1表达蛋白与pUL49间的相互作用相对较强;诱导细菌表达pGEX4T-3-CYB5D2、pGEX4T-3-C110RF17、pGEX4T-3-COL3A1、pGEX4T-3-UCHL3的GST融合蛋白与pUL49瞬时表达蛋白相互对应的GST-pull down,结果显示C11ORF17、COL3A1出现条带呈现阳性结果,而CYB5D2、UCHL3未出现条带;pC11ORF17表达的宿主细胞实验组重组病毒生长受到一定抑制,而pCOL3A1表达的宿主细胞实验组重组病毒生长与未处理组无显著差异。结论在体外HCMVA感染过程中,UL49的mRNA存在表达,其cDNA序列全长共2118bp,其中5’UTR长90bp,3’UTR长315bp,UL49开放阅读框编码570个氨基酸。多种预测法重复了pUL49蛋白的N端第228-243位氨基酸区域内或附近为B细胞识别区;用化学合成得到KRFDARADLAVY-KLH免疫原,获得效价高、特异性强的兔anti-HCMV pUL49抗血清。人巨细胞病毒UL49开放阅读框编码蛋白在病毒感染过程中存在表达,且pUL49为早期表达蛋白;pUL49与pp28对TX-100、蛋白胰酶的耐受相近,暗示两者定位于病毒颗粒同一区域(皮层)pUL49为Towne的生长必需基因;在表达pUL49的HFF细胞中,缺失UL49的Towne能部分得到回复生长;病毒感染过程pUL49定位于细胞质而非细胞核,随感染时间的持续有被招募于宿主细胞特定区域的趋势;pUL49与pp28在72、96hr存在共定位,暗示pUL49在感染晚期定位于细胞内质网;在病毒增殖过程中,anti-pUL49影响了病毒生长速度,但在感染过程中,未影响病毒的侵入环节。成功构建了酵母诱饵表达载体pGBKT7-UL49,经双杂交系统筛选,成功获得11个非重复克隆质粒;其中C110RF17、COL3A1表达蛋白与pUL49间的相互作用相对较强;GST-Pull down验证了该两个蛋白与pUL49的体外相互作用;pUL49与pC110RF17的相互作用可能影响病毒的增殖与生长,而pUL49与pCOL3A1的相互作用对病毒的增殖与生长基本无影响。

论文目录

  • 中文摘要
  • Abstract
  • 目录
  • 第一章 前言
  • 1. 人巨细胞病毒简介
  • 2. 人巨细胞病毒结构
  • 3. 人巨细胞病毒基因组
  • 4. 人巨细胞病毒临床分离株与实验病毒株
  • 5. 人巨细胞病毒生活周期及其基因表达
  • 5.1 人巨细胞病毒容许细胞及其体外生长
  • 5.2 人巨细胞病毒与宿主细胞连接及其穿入
  • 5.3 人巨细胞病毒包膜化、膜的融合
  • 5.3.1 人巨细胞病毒源基因表达的调节
  • 5.3.2 即刻早期基因表达蛋白的特征与功能
  • 5.3.3 早期基因表达蛋白的特征与功能
  • 5.4 人巨细胞病毒DNA复制
  • 5.5 人巨细胞病毒核衣壳形成
  • 5.6 皮层化与包膜化
  • 5.7 HCMV的DNA复制
  • 5.8 病毒的组装成数和释放
  • 6. 人巨细胞病毒的UL49基因简介与研究现状
  • 7. 人巨细胞病毒UL49基因功能研究设想
  • 8. 课题研究总体思路图
  • 第二章 实验材料、主要仪器与试剂或试剂配制
  • 1. 实验材料、主要仪器与试剂
  • 1.1 主要仪器
  • 1.2 菌种、病毒
  • 1.3 细胞
  • 1.4 质粒载体
  • 1.5 抗体
  • 1.6 酶
  • 1.7 试剂盒
  • 1.8 抗生素
  • 1.9 常用试剂
  • 2. 试剂配制
  • 2.1 培养基
  • 2.2 酵母双杂交实验所需试剂
  • 2.3 凝胶电泳所需溶液
  • 2.4 Western blotting溶液配制
  • 2.5 免疫荧光实验试剂
  • 2.6 抗生素的配置
  • 2.7 缓冲液
  • 2.8 DH5α超级感受态制备试剂
  • 2.9 其他试剂
  • 第三章 UL49 ORF转录图谱及其表达产物功能预测
  • 1. 前言
  • 2. 实验方法
  • 2.1 病毒培养与鉴定
  • 2.2 HCMVA总RNA提取
  • TM RACE cDNA Amplification Kit)'>2.3 UL49基因的5’末端扩增(BD SMARTTM RACE cDNA Amplification Kit)
  • TM RACE cDNA Amplification Kit扩增UL49基因3’末端'>2.4 利用BD SMARTTM RACE cDNA Amplification Kit扩增UL49基因3’末端
  • 2.5 U149基因全长cDNA序列扩增、克隆和序列分析
  • 3 结果
  • 3.1 人巨细胞病毒体外感染后出现细胞病变效应、具备病毒基因遗传标志
  • 3.2 UL49基因转录起始序列符合GenBank的UL49 ORF5'端序列
  • 3.3 UL49基因转录终止序列符合GenBank的UL49 ORF3’端序列
  • 3.4 确定人臣细胞病毒UL49基因全长cDNA序列
  • 4 讨论
  • 第四章 人巨细胞病毒UL49 ORF蛋白表达分析
  • 1. 前言
  • 2. 实验方法
  • 2.1 HCMV UL49编码蛋白的B细胞表位预测
  • 2.2 人巨细胞病毒UL49开放阅读框编码蛋白多克隆抗体制备
  • 2.3 UL49编码蛋白多克隆抗体特异性
  • 3 结果
  • 3.1 制备兔anti-HCMV pUL49多克隆抗体
  • 3.2 兔anti-HCMV pUL49抗血清特异性
  • 4 讨论
  • 第五章 pUL49蛋白分子结构与蛋白特性
  • 1. 前言
  • 2. 实验方法
  • 2.1 BAC质粒的抽提与纯化
  • 2.2 pcDNA3.1(+)-UL82的构建
  • 2.3 BAC与pcDNA3.1(+)-UL82共电转细胞
  • 2.4 病毒培养
  • 2.5 病毒提取
  • 2.6 病毒颗粒纯化
  • 2.7 病毒颗粒预处理
  • 2.7 WB
  • 3. 结果
  • 3.1 抽提的Towne-BAC质粒具备Towne-株的遗传基因特征
  • 3.2 构建pcDNA3.1(+)-UL82
  • 3.3 BAC与pcDNA3.1(+)-UL82共电转细胞出现病变效应
  • 3.4 重组Towne病毒具备Towne-株的遗传基因特征
  • 3.5 人巨细胞病毒UL49基因表达蛋白是一个早期β2亚型蛋白
  • 3.6 人巨细胞病毒UL49基因表达蛋白是一个病毒颗粒结构蛋白
  • 4 讨论
  • 第六章 UL49基因表达产物在病毒感染复制中的生物学功能
  • 1. 前言
  • 2. 实验方法
  • 2.1 BAC质粒的抽提与纯化(低拷贝大量抽提)
  • 2.2 Towne-BAC、delUL49-Towne-BAC的质粒DNA鉴定
  • 2.3 Towne-BAC、delUL49-Towne-BAC的质粒DNA与pcDNA3.1(+)-UL82-myc质粒共转染
  • 2.4 病毒空斑形成试验
  • 2.5 病毒的培养
  • 2.6 pcDNA3.1(+)-UL49-myc的真核细胞定位
  • 2.7 用anti-pUL49预处理的RV-Towne感染HFF
  • 2.8 用anti-pUL49预处理的RV-Towne感染HFF
  • 2.9 RV侵入实验
  • 3. 结果
  • 3.1 Towne-BAC、delUL49-Towne-BAC的质粒DNA具备相应遗传基因特征
  • 3.2 delUL49Towne BAC病毒无法包装成功
  • 3.3 delUL49Towne BAC病毒在HFF[pUL49]中的转染获得部分包装
  • 3.4 UL49基因表达产物在病毒感染过程中的亚细胞定位
  • 3.5 pUL49与其他HCMV典型结构蛋白在HFF[RV-Towne]细胞中共定位
  • 3.6 用anti-pUL49预处理的RV-Towne在HFF中的生长
  • 3.7 anti-pUL49预处理的RV-Towne感染HFF初期侵入效应
  • 4. 讨论
  • 第七章 与pUL49互作蛋白的筛选及机制的研究
  • 1. 前言
  • 2. 实验方法
  • 2.1 诱饵质粒pGBKT7-UL49构建
  • 2.2 pGBKT7-UL49转化酵母AH109
  • 2.3 酵母质粒抽提
  • 2.4 酵母质粒电转至AH109
  • 2.5 转化细胞AH109[pGBKT7-UL49]的毒性与自激活
  • 2.6 β-半乳糖苷酶活性filter-assay实验
  • 2.7 蛋白印迹(Wstern Blotting)分析AH109[pGBKT7-UL49]的pUL49蛋白表达
  • 2.8 双杂交阳性克隆的PCR鉴定
  • 2.9 酶切去除重复片断
  • 2.10 GST-PULLDOWN
  • 2.11 HFF[pCDNA3.1(+)-COL3A1/pCDNA3.1(+)-C11ORF17]感染RV-Towne效应
  • 3. 结果
  • 3.1 构建诱饵质粒pGBKT7-UL49
  • 3.2 pGBKT7-UL49转化AH109
  • 3.3 诱饵蛋白对AH109无毒性、自激活
  • 3.4 pGBKT7-UL49融合蛋白的表达
  • 3.5 人胚肾细胞cDNA文库扩增与鉴定(Li)
  • 3.6 用pGBKT7-UL49从人胚肾细胞cDNA文库中筛选与UL49相互作用的分子
  • 3.7 PCR鉴定SD/-Trp-Leu-His-Ade阳性酵母克隆
  • 3.8 HaeⅢ酶切鉴定SD/-Trp-Leu-His-Ade阳性酵母克隆细菌质粒
  • 3.9 SD/-Trp-Leu-His-Ade阳性酵母克隆的分析
  • 3.10 再验证pUL49与筛选阳性蛋白的相互作用
  • 3.11 体外确证筛选的基因编码物与pUL49相互作用
  • 3.12 重组病毒RV-Towne在HFF[pCDNA3.1(+)-COL3A1/pCDNA3.1(+)-C11ORF17]中的生长
  • 4. 讨论
  • 第八章 全文小结与研究展望
  • 参考文献
  • 附录
  • 缩写词中英文对照
  • 在学期间发表论文清单
  • 致谢
  • 相关论文文献

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