培养方法对土壤可培养细菌多样性的影响及两株新菌的初步鉴定

培养方法对土壤可培养细菌多样性的影响及两株新菌的初步鉴定

论文摘要

提高土壤微生物的可培养性,获得纯培养微生物菌株,是微生物生态学研究的基础。目前由于技术手段的限制,以及人类认识水平的不足,使得自然界中微生物总数的99%还难以用纯培养技术获得分离和培养。因此研究和开发这99%的未培养微生物已成为国内外的一个热点。本论文采用三种营养物质浓度不同的培养基对土壤细菌进行分时段计数,以细菌通用引物扩增细菌16S rDNA片段,用限制性内切酶Hha I酶切PCR产物,对酶切图谱进行分型,研究了不同培养方法对土壤细菌多样性和可培养的影响;本论文还对从土壤中分离得到的两株与其相邻菌种具有较大差别的新菌株(标记为TR6-7和TR6-11)进行了初步鉴定。结果表明,LB、CSEA. WSA培养基192h后每g干土获得的细菌数量分别为14.84×107、10.27×107和6.91×107CFU,但微生物多样性指数以WSA为最高,LB多样性指数最低;三种培养基培养的细菌菌群有一定的相似性,LB和CSEA培养基间的Jaccard指数为57.69%,LB和WSA培养基之间为53.13%,而CSEA和WSA培养基的相似性指数达66.67%;96-192 h细菌的丰富度最高,0-48h细菌丰富度最低,并且三种培养基中单一OTUs类型的43.9%均是在96h后才出现的。16S rDNA测序结果表明,所获得的土壤细菌优势种群在分类方面主要属于γ-和β-变形杆菌以及放线菌亚门,其中某些OTUs中的16S rDNA序列与Burkholderiaceae bacterium、Rhodococcus和Mycobacterium属具有较高的同源性,推测其细胞能够分泌复苏促进因子,有效地提高土壤细菌的可培养性。TR6-7革兰氏染色反应呈阳性,细胞形态呈椭圆状,无鞭毛和菌毛;最适生长温度为30℃,最适pH值为6.08,最适的盐浓度为2%,无Nacl等盐离子依赖性。TR6-7菌株不能使明胶液化,不能使淀粉水解, V.P.实验为阴性,不能使甲基红变红,不产生氨气,不产生吲哚,但能产生H2S,能使过氧化氢溶液产生小气泡,能使硝酸盐还原。TR6-7能利用蔗糖、半乳糖、果糖、麦牙糖、山梨醇、阿拉伯糖、蜜三糖、核糖、乳糖、甘露糖、肌醇、葡萄糖、木糖为唯一碳源生长,但不利用甘露醇和甜醇。TR6-7的主要脂肪酸为C22:1 w7c/22:3 w3c. TR6-7的16S rDNA序列与其最相邻Phycicoccusdokdonensis KCTC 19248T的同源性为97.2%。基于以上数据我们初步鉴定菌株TR6-7属于Phycicoccus属的一个新种,并命名为Phycicoccus sp. TR6-7。TR6-11革兰氏染色反应呈阳性,细胞形态呈长杆状,无鞭毛和菌毛,无运动能力,好氧;在GPM. NA培养基上长势良好,最适生长温度为30℃,最适的盐浓度为0.5%,无Nacl等盐离子依赖性,最适pH值为6.8。V.P.实验为阴性,不能使甲基红变红,不产生氨气,不产生吲哚,不能水解Tweens40,80,但能水解Tweens20.TR6-11能产生H2S,能使明胶液化,能使淀粉水解,能使过氧化氢溶液产生小气泡,能使硝酸盐还原。能利用蔗糖、半乳糖、果糖、麦牙糖、山梨醇、阿拉伯糖、蜜三糖、核糖、乳糖、甘露糖、肌醇、葡萄糖、木糖、甘露醇、甜醇、鼠李糖为唯一碳源生长。TR6-11的主要脂肪酸为C22:1 w7c/22:3 w3c, C24:2 w6c。TR6-11的16S rDNA序列与最其相邻的Humihabitans NRRL B-24470 T同源性为97.1%。基于以上数据我们初步鉴定菌株TR6-11属于Humihabitans属的一个新种,并命名为Humihabitans sp. TR6-11.

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 符号与缩略语说明
  • 前言
  • 第一章 文献综述
  • 一、土壤微生物的多样性
  • 二、土壤微生物多样性的研究方法
  • 三、未培养微生物的研究进展
  • 四、微生物分类鉴定的研究方法
  • 参考文献
  • 第二章 培养方法对土壤可培养细菌多样性的影响
  • 1 材料与方法
  • 2 结果
  • 3 讨论
  • 参考文献
  • 第三章 Phycicoccus sp.TR6-7的初步鉴定
  • 1 材料与方法
  • 2 结果与分析
  • 3 结果讨论
  • 参考文献
  • 第四章 Humihabitans sp.TR6-11的初步鉴定
  • 1 材料与方法
  • 2 结果与分析
  • 3 结果讨论
  • 参考文献
  • 全文总结
  • 创新之处
  • 附录Ⅰ 攻读硕士学位期间发表的论文
  • 附录Ⅱ 文中所用的培养基和试剂配方
  • 致谢
  • 相关论文文献

    • [1].中科院揭示细菌多样性与温度和营养盐的关系[J]. 食品工业 2017(02)
    • [2].微宇宙模拟溢油条件下沉积物中蓝细菌多样性[J]. 微生物学通报 2017(07)
    • [3].峨眉山大蚯蚓肠道可培养细菌多样性研究[J]. 生命科学研究 2017(03)
    • [4].趋磁细菌多样性与应用研究进展[J]. 中国生物工程杂志 2019(12)
    • [5].不同农地整治措施对土壤细菌多样性的影响[J]. 长江流域资源与环境 2019(11)
    • [6].北欧海海水可培养细菌多样性[J]. 微生物学报 2017(09)
    • [7].木论喀斯特常绿落叶阔叶混交林土壤细菌多样性及其最优采样数[J]. 生态学报 2019(09)
    • [8].日偏食对乌鲁木齐空气细菌多样性的影响[J]. 新疆农业科学 2012(03)
    • [9].北极新奥尔松地区土壤及沉积物中可培养细菌多样性及分布特征分析[J]. 海洋环境科学 2018(02)
    • [10].乌拉特荒漠草原小针茅(Stipa klemenzii)群落土壤细菌多样性及垂直分布特征[J]. 中国沙漠 2016(06)
    • [11].采收期松茸菌塘土壤理化特性及对细菌多样性的影响[J]. 微生物学通报 2016(03)
    • [12].五大连池药泉湖沉积物的细菌多样性[J]. 黑龙江八一农垦大学学报 2020(01)
    • [13].基于高通量测序的郫县豆瓣后发酵期细菌多样性研究[J]. 食品科学 2017(10)
    • [14].中江县丹参连作土壤细菌多样性研究[J]. 西南农业学报 2019(12)
    • [15].基于宏基因组的野生冬虫夏草周际土壤细菌多样性分析[J]. 成都中医药大学学报 2020(01)
    • [16].泰山不同海拔土壤的细菌多样性初步分析[J]. 山东农业科学 2020(06)
    • [17].自然发酵酸粥中细菌多样性分析及优势乳酸菌的分离与鉴定[J]. 食品科技 2020(10)
    • [18].鲜鸡蛋蛋壳表面细菌多样性分析[J]. 中国食品卫生杂志 2020(04)
    • [19].高通量测序分析胡萝卜连作与轮作土壤细菌多样性[J]. 基因组学与应用生物学 2020(05)
    • [20].自然发酵腐乳中细菌多样性评价[J]. 食品研究与开发 2019(16)
    • [21].不同原料四川发酵泡菜的细菌多样性分析[J]. 中国调味品 2016(02)
    • [22].不同土地利用方式下滨海盐土细菌多样性变化[J]. 西北农业学报 2011(08)
    • [23].白令海北部表层沉积物中细菌多样性的研究[J]. 极地研究 2009(01)
    • [24].南极长城湾海绵共附生可培养细菌多样性研究[J]. 海洋渔业 2017(05)
    • [25].基于16SrDNA分析的浒苔外生细菌多样性研究[J]. 水产学报 2016(01)
    • [26].吉林省典型生态区玉米种植土壤细菌多样性研究[J]. 生态与农村环境学报 2020(10)
    • [27].基于高通量测序分析老面细菌多样性[J]. 食品工业科技 2016(15)
    • [28].高寒草甸植物群落功能属性与土壤细菌多样性关系[J]. 中国科学:生命科学 2020(01)
    • [29].沼灌对土壤氨氮、总磷及细菌多样性的影响[J]. 农业生物技术学报 2019(10)
    • [30].短期玉米秸秆还田对土壤细菌多样性的影响[J]. 干旱区资源与环境 2017(09)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  

    培养方法对土壤可培养细菌多样性的影响及两株新菌的初步鉴定
    下载Doc文档

    猜你喜欢