微生物法拆分制备(S)-2,2-二甲基环丙烷甲酰胺的菌种选育及转化条件的研究

微生物法拆分制备(S)-2,2-二甲基环丙烷甲酰胺的菌种选育及转化条件的研究

论文摘要

(S)-2,2-二甲基环丙烷甲酰胺是肾二肽脱氢酶抑制剂——西司他丁合成的关键中间体,市场需求广泛。目前,手性生物催化已成为制备光学纯化合物的经典方法,通过R-立体选择性酰胺酶动力学拆分,制备(S)-2,2-二甲基环丙烷甲酰胺,反应条件温和、立体专一性好、环境友好,具有很好的工业化前景。本论文主要围绕R-酰胺酶产生菌的筛选、菌种的生理生化鉴定、培养条件与转化条件的优化等几方面展开研究。首先,本文通过一种基于酰基转移反应的光学选择性酰胺酶的筛选模型,从土壤中筛选到一株具有较严格的R-型选择性酰胺酶的产生菌株ZJB-07021,该菌株能够选择性转化外消旋体中的(R)-2,2-二甲基环丙烷甲酰胺生成相应的酸。通过生理生化特征、Biolog的革兰氏阳性细菌检测试验卡(GP2)鉴定、16S rDNA序列分析,鉴定为表皮短杆菌(Brevibacterium epidermidis)。这也是Brevibacteriumepidermidis种内第一次报道的具有R-型酰胺酶产生菌,值得进一步研究。采用响应面(RSM)与单因素相结合的分析法,对R-酰胺酶产生菌B.epidermidis ZJB-07021的培养条件进行优化。首先运用了单因子试验筛选出了发酵培养的最佳pH、温度等条件,以及最适发酵培养基的组成成分。在此基础上采用Plackett-Burman(PB)设计法,对8种影响产酶的因素进行评价,实验结果表明,葡萄糖、酵母粉与乙酰胺含量对菌株产酰胺酶的活力具有显著的影响。通过旋转中心组合实验考察了葡萄糖、酵母粉和乙酰胺这三个主要因素对菌株所产酰胺酶活力的影响。发酵培养基优化结果为:葡萄糖17.00 gl-1酵母粉15.74 gl-1乙酰胺7.05 gl-1,采用优化后的发酵培养条件进行摇瓶发酵培养,酰胺酶的酶活达到72.14 Ul-1,比优化前的初始发酵培养条件下的酶活提高了73.3%。论文最后考察了酶催化反应的环境对B.epidermidis ZJB-07021酰胺酶催化的酶活与立体选择性的影响。确定pH 7.6的Tris-HCl缓冲溶液作为该酰胺酶最适的反应体系;通过温度影响实验我们发现,45℃时酶活最高,初速度达到28.2μmol min-1g-1,为14℃时的3.6倍,但其立体选择性随温度的升高而不断降低;根据Arrhenius方程拟合直线我们可以计算得到14~45℃范围内的表观活化能(Eα)为32.92 kJ mol-1;通过实验我们得到该酶催化反应过程的2个重要热力学参数:ΔΔH+=-37.3 kJ mol-1,ΔΔS+=-95.7 J mol-1;经计算该菌株胞内酰胺酶在35℃和40℃下的半衰期(t1/2)分别为36.23和23.73 h,说明该酰胺酶的热稳定性较好,这对进一步的工业化生产是十分有益的;通过共溶剂实验,我们发现向反应体系中添加10%(v/v)的甲醇后,酶活力提高了28.2%,立体选择性也有一定的提高。反应条件优化后,通过双倒数作图法,求得该反应条件下的反应动力学参数:Vmax=48.22μmol min-1g-1,Km=1.06 mM。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 第一章 绪论
  • 1.1 酰胺酶(Amidase)
  • 1.1.1 酰胺酶的来源及性质
  • 1.1.2 酰胺酶的分类
  • 1.1.3 酰胺酶酶催化反应的作用机理
  • 1.1.4 酰胺酶在光学纯酰胺合成中的应用
  • 1.1.5 酰胺酶在氧肟酸类物质合成中的应用
  • 1.2(S)-2,2-二甲基环丙烷甲酰胺—合成西司他丁的关键中间体
  • 1.2.1 西司他丁简介及其用途
  • 1.2.2(S)-2,2-二甲基环丙烷甲酰胺(甲酸)的合成方法
  • 1.3 本论文的研究内容
  • 参考文献
  • 第二章 R-酰胺酶产生菌的筛选鉴定及其特性研究
  • 2.1 引言
  • 2.2 材料与方法
  • 2.2.1 化学试剂与主要仪器
  • 2.2.2 培养基的配制
  • 2.2.3 菌种筛选方案
  • 2.2.4 菌种的鉴定
  • 2.2.5 静息细胞转化
  • 2.2.6 分析方法
  • 2.3 结果与讨论
  • 2.3.1 R-酰胺酶产生菌的筛选
  • 2.3.2 确定菌株ZJB-07021的降解途径
  • 2.3.3 手性毛细管气相色谱确定底物、产物的立体构型
  • 2.3.4 菌株鉴定
  • 2.3.5 立体选择性催化外消旋2,2-二甲基环丙甲酰胺
  • 2.3.6 尿素对该酰胺酶的抑制
  • 2.4 本章小结
  • 参考文献
  • 第三章 R-酰胺酶产生菌Brevibacterium epidermidis ZJB-07021培养条件的优化
  • 3.1 引言
  • 3.2 材料与方法
  • 3.2.1 供试菌株
  • 3.2.2 培养基
  • 3.2.3 菌体培养
  • 3.2.4 主要仪器与试剂
  • 3.2.5 细胞生物量的测定
  • 3.2.6 酰胺酶活力的测定
  • 3.2.7 响应面实验设计
  • 3.3 结果与讨论
  • 3.3.1 培养条件对菌体生长和产酶的影响
  • 3.3.2 发酵培养基组成的单因素优化
  • 3.3.3 响应面优化发酵培养基关键因素的确定
  • 3.3.4 响应面分析优化菌株B.epidermidis ZJB-07021发酵培养基
  • 3.3.5 发酵培养过程中菌体生长及产酶曲线
  • 3.4 本章小结
  • 参考文献
  • 第四章 B.epidermidis ZJB-07021拆分2,2-二甲基环丙烷甲酰胺反应条件的研究
  • 4.1 引言
  • 4.2 材料与方法
  • 4.2.1 菌种与培养基
  • 4.2.2 细胞培养
  • 4.2.3 主要仪器与试剂
  • 4.2.4 静息细胞转化
  • 4.2.5 pH的影响
  • 4.2.6 转化温度的影响
  • 4.2.7 共溶剂的影响
  • 4.2.8 分析方法
  • 4.3 结果与讨论
  • 4.3.1 底物浓度对拆分效果的影响
  • 4.3.2 反应体系pH对菌体催化拆分(R,S)-1影响
  • 4.3.3 反应温度对静息细胞催化拆分(R,S)-1的影响
  • 4.3.4 添加共溶剂对静息细胞催化拆分(R,S)-1的影响
  • 4.3.5 反应动力学参数的确定
  • 4.4 本章小结
  • 参考文献
  • 第五章 总结与展望
  • 5.1 结论
  • 5.2 展望
  • 附录
  • 1.实验涉及的主要仪器设备
  • 2.实验涉及的缓冲液配方
  • 攻读硕士学位期间发表论文情况
  • 致谢
  • 相关论文文献

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