水杨酸和茉莉酸甲酯诱导青蒿素合成基因表达的机理研究

水杨酸和茉莉酸甲酯诱导青蒿素合成基因表达的机理研究

论文摘要

疟疾是全球危害人类健康最严重的虫媒传染病,广泛流行于热带和亚热带一些发展中国家。传统抗疟药氯喹等因疟原虫产生抗性而逐步被淘汰,青蒿素及其衍生物已成为WHO指定的抗疟特效药。但是,天然药用植物青蒿中青蒿素的含量极低,约为0.4%-1.0%,因而不能满足广大疟疾流行地区对抗疟药的迫切需求。为了探讨青蒿素高产的分子机理,本研究从环境胁迫诱导青蒿素合成基因表达角度出发,利用紫穗槐二烯合酶基因启动子-β-葡萄糖苷酸酶(pADS-GUS)转基因烟草表型快速鉴定平台揭示了pADS的诱导表达模式。结果发现,经水杨酸(SA)、茉莉酸甲酯(MJ)处理后,GUS活性显著增强,表明SA、MJ都能诱导ADS基因表达。在此基础上,我们利用半定量RT-PCR技术研究了SA、MJ对3种青蒿素合成基因转录水平的影响,结果发现ADS基因受MJ、SA诱导,CYP71AV1、CPR基因不受SA、MJ诱导。为了了解SA、MJ信号转导是否与钙离子(Ca2+)有关,我们利用半定量RT-PCR技术研究了SA、MJ联合Ca2+通道阻滞剂氯化镧(LaCl3)处理青蒿试管苗后青蒿素合成基因转录水平的变化。结果发现,处理后ADS mRNA降低,而CYP71AV1、CPR mRNA无明显变化,表明Ca2+仅影响SA、MJ对ADS基因表达的诱导。进一步研究发现,SA、MJ处理青蒿试管苗后,青蒿叶片组织释放的1O2迅速增加,而用1O2供体虎红(RB)处理青蒿试管苗后,青蒿叶片组织释放的1O2不升反降。青蒿素含量测定结果显示,SA、MJ处理可以明显提高青蒿试管苗的青蒿素含量。相反,RB处理导致青蒿素含量降低,表明仅有内源1O2而不是外源1O2可促进青蒿素合成。同时也发现,SA、MJ使青蒿试管苗中的谷胱甘肽(GSH)含量、H2O2水平和过氧化氢酶(CAT)活性相应增加,导致青蒿素合成基因表达诱导,最终促进青蒿素产量提高。本研究的创新点包括:(1)发现SA、MJ可以模拟环境胁迫促进青蒿素合成;(2)证实SA、MJ可以诱导青蒿素合成基因表达;(3)阐明SA、MJ可以影响细胞的氧化还原状态;(4)区分内源与外源1O2及其在青蒿素合成中的作用。本研究从分子水平阐明了SA、MJ促进青蒿素高产的作用机理,有助于科学指导青蒿的种植、田间管理、收获和加工等青蒿素生产环节,为缓解青蒿素原料紧缺开辟一条新的途径。

论文目录

  • 摘要
  • Abstract
  • 引言
  • 正文
  • 第一章 国内外研究综述
  • 一、青蒿素的发现及来源
  • (一) 青蒿素的发现及历史
  • (二) 青蒿素的来源
  • 二、青蒿素生物合成前体研究现状
  • (一) 青蒿酸
  • (二) 青蒿素B
  • (三) 青蒿烯
  • 三、青蒿素的生物合成路径及合成途径中的关键酶
  • (一) 青蒿素生物合成途径
  • (二) 青蒿素生物合成途径的关键酶及编码的基因
  • 四、青蒿素高产的研究
  • (一) 影响青蒿素产量的因素
  • (二) 提高青蒿素产量的手段
  • 五、次级信号诱导植物次生代谢产物的研究概况
  • 六、研究目的及意义
  • 七、创新思路与设计方案
  • 第二章 青蒿素合成基因启动子诱导的表型鉴定
  • 一、材料
  • (一) 植物材料
  • (二) 主要试剂
  • (三) 主要仪器
  • 二、实验方法
  • (一) SA、MJ处理转化烟草
  • (二) GUS组织化学染色法
  • (三) 化学分光光度法
  • 三、结果
  • (一) GUS基因表达的定性鉴定
  • (二) GUS基因表达的定量测定
  • 四、讨论
  • 2+相关性'>第三章 SA/MJ诱导青蒿素生物合成基因及其Ca2+相关性
  • 一、材料
  • (一) 植物材料
  • (二) 主要试剂
  • 二、实验方法
  • (一) SA、MJ处理青蒿植株
  • 3处理青蒿植株'>(二) SA、MJ联合LaCl3处理青蒿植株
  • (三) 青蒿素合成基因的半定量分析
  • 三、结果
  • (一) SA/MJ对ADS、CYP71AV1基因的诱导
  • (二) SA/MJ对CPR基因的诱导
  • 2+对SA、MJ诱导ADS基因的影响'>(三) Ca2+对SA、MJ诱导ADS基因的影响
  • 2+对SA、MJ诱导CYP71AV1基因的影响'>(四) Ca2+对SA、MJ诱导CYP71AV1基因的影响
  • 2+对SA、MJ诱导CPR基因的影响'>(五) Ca2+对SA、MJ诱导CPR基因的影响
  • 四、讨论
  • 1O2供体对内源1O2释放的影响'>第四章 SA/MJ及外源1O2供体对内源1O2释放的影响
  • 一、材料
  • (一) 植物材料
  • (二) 主要试剂
  • (三) 仪器
  • 二、实验方法
  • (一) SA、MJ处理青蒿植株
  • (二) RB处理青蒿植株
  • 1O2的检测'>(三)1O2的检测
  • 三、结果
  • 1O2释放的时间进程'>(一) SA、MJ刺激1O2释放的时间进程
  • 1O2释放的时间进程'>(二) RB处理刺激1O2释放的时间进程
  • 四、讨论
  • 1O2在青蒿素合成中的作用'>第五章 内源及外源1O2在青蒿素合成中的作用
  • 一、材料
  • (一) 植物材料
  • (二) 主要试剂
  • (三) 主要仪器
  • 二、实验方法
  • (一) 青蒿试管苗的预处理
  • (二) 样品制备
  • (三) 青蒿素含量测定
  • 三、结果
  • (一) SA、MJ处理对青蒿素含量的影响
  • (二) RB处理对青蒿素含量的影响
  • 四、讨论
  • 第六章 SA和MJ对活性氧水平的调控
  • 一、材料
  • (一) 植物材料
  • (二) 主要试剂
  • (三) 仪器
  • 二、实验方法
  • (一) GSH含量的测定
  • (二) CAT活力的测定
  • 2O2的检测'>(三) H2O2的检测
  • 三、结果
  • (一) SA、MJ对组织中GSH水平的影响
  • (二) SA、MJ对CAT活力的影响
  • 2O2含量的影响'>(三) SA、MJ处理对组织中H2O2含量的影响
  • 四、讨论
  • 结语
  • 参考文献
  • 附录
  • 致谢
  • 相关论文文献

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