细胞浆PrP在SH-SY5Y细胞中的表达及其对细胞凋亡的影响

细胞浆PrP在SH-SY5Y细胞中的表达及其对细胞凋亡的影响

论文摘要

蛋白的异常折叠或错误构象可引起动物和人类的神经退行性疾病,如动物的疯牛病(BSE)、羊的瘙痒症(scrapie);人类的阿尔茨海默症、朊病毒病等。通过我们的实验发现朊蛋白的异常构型会产生细胞毒性,特别是由内质网(ER)逆转入胞浆中的朊蛋白(CytoPrP)及滞留在胞浆中的未经正常生理途径的异常折叠的PrP作用更为显著,被证明具有神经毒性并且诱导神经元的迅速死亡。为探讨CytoPrP的聚集引起的神经毒性的机制,我们构建缺失PrP蛋白N端信号肽和C端信号肽(GPI)的质粒,并导入人的神经母细胞瘤细胞系(SH-SY5Y)中。MTT检测和Trypan Blue检测显示转染表达胞浆PrP(CytoPrP)组在培养液中加入蛋白酶抑制剂MG-132时,在SH-SY5Y中的表达与转染野生型PrP(PrP1-253)表达质粒组相比细胞的存活率明显降低(P<0.01),而在细胞浆中表达的绿色荧光蛋白GFP则无此影响。还发现,CytoPrP的细胞毒性作用受蛋白酶抑制剂含量的影响。蛋白酶敏感性实验显示,CytoPrP相对于PrP1-253具有一定的蛋白酶K(PK)抗性,CytoPrP可抵抗8μg/mL PK的消化,PrP1-253只可部分抵抗4μg/mL PK的消化。显著的细胞凋亡现象在CytoPrP表达的细胞中可被检测到,包括线粒体膜电位(ψm)的降低、caspase-3活性的增加、annexin V/PI双染阳性细胞的增多及Bcl-2蛋白水平的降低的等。并且,过氧化氢酶(catalase)的水平在CytoPrP表达细胞中有显著的增加。除此之外,DNA片段梯子实验和TUNEL检测也揭示了CytoPrP表达细胞中明显的晚期凋亡迹象。这些数据提示CytoPrP在胞浆中的聚集,可能启动细胞凋亡,而线粒体相关的凋亡途径可能起着至关重要的作用。

论文目录

  • 目录
  • 摘要
  • Abstract
  • 前言
  • 第一章 文献综述
  • 1.1 朊蛋白简介
  • 1.2 PrP在胞内能够提高细胞活性
  • 1.2.1 PRNP基因敲除(Prnp-/-)小鼠的海马神经细胞更易受凋亡和氧化应激因素的影响
  • 1.2.2 PrP的异常表达保护人的原代神经细胞免受Bax介导的细胞凋亡
  • 1.2.3 内源表达的PrP可抑制细胞凋亡
  • 1.2.4 PrP的神经保护性机制——阻止线粒体早期凋亡途径
  • 1.3 PrP在体外可以提高细胞活力
  • 1.3.1 PrP可以保护大脑免受Depple蛋白介导的细胞死亡的影响
  • 1.3.2 PrP阻止N端截短的PrP(PrPΔ32-134)介导的神经退化
  • 1.3.3 PrP59-91使细胞免受铜离子介导的神经毒性作用
  • 1.4 关于PrP的神经保护性功能的争议
  • 1.5 PrP在朊蛋白疾病中的神保护性功能
  • 1.6 小结
  • 第二章 实验研究
  • 2.1 实验材料
  • 2.1.1 质粒
  • 2.1.2 菌株
  • 2.1.3 细胞系
  • 2.1.4 工具酶和分子量标准
  • 2.1.5 试剂盒和其它主要化学试剂
  • 2.1.6 细菌和细胞培养基
  • 2.1.7 主要仪器和设备
  • 2.1.8 常用的溶液、缓冲液
  • 2.2 试验方法
  • 2.2.1 去除N端和C端信号肽的胞浆PrP的PRNP基因及GFP基因的获得
  • 2.2.2 PCR及酶切产物的回收
  • 2.2.3 克隆载体的构建
  • 2.2.4 重组体的筛选和鉴定
  • 2.2.5 真核表达载体的构建
  • 2.2.6 pcDNA3.1(zero+)空载体及pcONA3.1-huCytoPrP、pcDNA3.1-GFP、pcDNA3.1-huPrP1-253真核表达载体质粒的大量提取纯化
  • 2.2.7 细胞的复苏
  • 2.2.8 细胞的传代
  • 2.2.9 脂质体介导SH-SYSY细胞的瞬时转染
  • 2.2.10 间接免疫荧光鉴定转染后重组PrP蛋白的表达情况
  • 2.2.11 Western blot检测转染后重组PrP蛋白的表达情况
  • 2.2.12 MTT方法分析胞浆表达CytoPrP对细胞生长的影响
  • 2.2.13 Trypan blue法检测细胞死亡百分比
  • 2.2.14 JC-1染色分析线粒体膜电位ψm的变化
  • 2.2.15 Annexin V/PI双染检测细胞早期凋亡
  • 2.2.16 DNA末端原位标记染色法(TUNEL)
  • 2.2.17 DNA Ladder检测
  • 2.2.18 caspase-3活性的检测
  • 2.2.19 表达CytoPrP的SH-SY5Y细胞中凋亡相关蛋白Bax和Bcl-2的检测
  • 2.2.20 谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)活性检测
  • 2.2.21 过氧化氢酶(catalase)活性的检测
  • 2.3 实验结果
  • 2.3.1 胞浆中CytoPrP真核表达质粒的构建
  • 2.3.2 PrP1-253及CytoPrP在细胞内的不同表达形式
  • 2.3.3 胞浆CytoPrP蛋白具有较强的PK抗性
  • 2.3.4 CytoPrP的存在可诱导显著的细胞毒性效应
  • 2.3.5 CytoPrP对SH-SY5Y细胞形变化变的影响
  • 2.3.6 CytoPrP的细胞毒性作用受蛋白酶抑制剂含量的影响
  • 2.3.7 CytoPrP诱导SH-SY5Y细胞的早期凋亡
  • a CytoPrP对线粒体膜电位ψm的影响
  • b Caspase家族成员参与CytoPrP蛋白诱导的细胞凋亡
  • 2.3.8 CytoPrP诱导SH-SY5Y细胞的晚期凋亡
  • a Annexin-V/PI双染检测细胞凋亡
  • b CytoPrP表达对SH-SY5Y细胞染色质DNA的影响
  • c 原位标记染色法检测的细胞凋亡(TUNEL)
  • 2.3.9 Bcl-2水平在CytoPrP表达的细胞中降低
  • 2.3.10 表达CytoPrP的SH-SY5Y细胞过氧化氢酶水平降低,谷胱甘肽还原酶不变
  • 2.4 讨论
  • 第三章 结论
  • 参考文献
  • 附录
  • 附录1.SCI文章(第一作者,附摘要)
  • 附录2.英文缩略词及英、汉对照
  • 附录3.胞浆CytoPrP aa23-230基因序列测序结果
  • 附录4.硕士期间的其它研究成果
  • 致谢
  • 攻读硕士期间发表的SCI及中文期刊论文
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