转染VEGF165基因的内皮祖细胞移植治疗慢性深静脉血栓的实验研究

转染VEGF165基因的内皮祖细胞移植治疗慢性深静脉血栓的实验研究

论文摘要

目的:研究细胞移植与基因转染对慢性深静脉血栓的协同治疗作用,为慢性深静脉血栓的治疗提供一种新的治疗思路。方法:首先用pAdEasy系统构建携有血管内皮生长因子165(VEGF165)的重组腺病毒载体。HEK293A细胞包装、重组、扩增腺病毒颗粒,荧光显微镜观察绿色荧光表达。PCR、双酶切、基因测序进行鉴定。同时用Ficoll法分离大鼠骨髓单个核细胞,EBM-2MV培养基培养扩增骨髓源性EPCs并进行鉴定。MTT法描绘生长曲线。再用Ad-VEGF165体外转染EPCs,荧光显微镜观察绿色荧光表达,激光共聚焦测转染效率,MTT法测对生长活性的影响,ELISA检测上清中VEGF的表达。转染后行Dil体外标记EPCs。然后结扎大鼠肾下段下腔静脉建立慢性深静脉血栓模型,分四组:A组(n=25只),基因转染的EPCs移植组,移植1ml含有106个带有VEGF165的EPCs细胞悬液;B组((n=25只),单纯EPCs组,移植1ml含有个106EPCs细胞悬液;C组((n=25只),转染空病毒的EPCs组,移植1ml含有106个转染空病毒的EPCs细胞悬液;D组((n=25只),空白对照组,移植1ml培养基。移植后分时间段取出血栓段下腔静脉及血栓,应用实时荧光定量PCR技术检测VEGF、ANG-1 mRNA的表达变化,同时应用western blot测下腔静脉及血栓内VEGF、ANG-1蛋白表达变化;HE染色及vWF免疫组化染色观察血栓机化再通情况,扫描电镜观察血栓中新生血管通道。高倍显微镜下计数血栓再通毛细血管密度。采用SPSS11.5软件进行分析,P<0.05,有统计学意义。结果:成功构建了Ad-VEGF165,成功培养了大鼠骨髓源性内皮祖细胞。Ad-VEGF165能有效转染EPCs,合适比率的转染对EPCs生长具有促进作用,转染后的EPCs能高分泌VEGF蛋白。移植后通过标记观察EPCs在体内存活并分化为内皮细胞。EPCs移植后,A、B、C、D四组VEGF、ANG-1 mRNA均有表达,A组较B、C、D组明显上调(P<0.05),B、C组较D组明显上调(P<0.05),B组和C组之间无统计学意义(P>0.05)。移植后四组血栓再通毛细血管密度A组明显高于B、C组(P<0.05)及D组(P<0.01),B、C组之间无统计学意义,B、C组明显高于D组(P<0.05),有统计学意义。免疫组化染色vWF确定再通管道为新生血管,管道为内皮细胞组成。结论: Ad-VEGF165能成功转染EPCs,合适比率的转染能改进EPCs质量,移植后促血管新生能力明显增强,显著加快血栓机化再通。

论文目录

  • 中文摘要
  • Abstract
  • 技术路线略图
  • 引言
  • 第一部分 血管内皮生长因子165 重组腺病毒(Ad-VEGF165)的构建
  • 材 料
  • 方法
  • 讨论
  • 第二部分 大鼠骨髓源性内皮祖细胞的培养及鉴定
  • 材料
  • 方法
  • 结果
  • 讨论
  • 第三部分 Ad-VEGF165 体外转染内皮祖细胞的实验研究
  • 材料
  • 方法
  • 结果
  • 讨论
  • 第四部分 Ad-VEGF165 转染内皮祖细胞移植治疗慢性深静脉血栓的体内研究
  • 材料
  • 方法
  • 结果
  • 讨论
  • 全文总结
  • 参考文献
  • 攻读博士学位期间发表的论文
  • 附图
  • 综述
  • 缩略词表
  • 致谢
  • 详细摘要
  • 相关论文文献

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    • [4].PcDNA3.1-VEGF165质粒转染神经母细胞瘤细胞后VEGF165的表达[J]. 中国脊柱脊髓杂志 2008(04)
    • [5].人VEGF165基因转染成人成肌细胞的实验研究[J]. 激光生物学报 2010(01)
    • [6].纳米金阻断VEGF165信号传导并抑制裸鼠肝癌血管生成[J]. 中国肿瘤临床 2009(05)
    • [7].VEGF165基因重组腺相关病毒构建及转染猪骨髓间充质干细胞的研究[J]. 医学研究杂志 2014(02)
    • [8].腺病毒介导VEGF165基因转移对新生大鼠缺氧缺血性脑损伤的保护作用[J]. 中国当代儿科杂志 2008(06)
    • [9].VEGF165b和VEGF165在胃癌组织中的表达及与预后的关系[J]. 中国现代医学杂志 2015(27)
    • [10].体外重组表达血管生长因子VEGF165单克隆抗体的制备及鉴定[J]. 细胞与分子免疫学杂志 2011(10)
    • [11].临床剂量浓度透明质酸对骨髓间充质干细胞旁分泌及过表达VEGF165作用影响的实验研究[J]. 中国矫形外科杂志 2014(09)
    • [12].靶向超声介导VEGF165基因治疗左向右分流肺动脉高压兔模型的实验性研究[J]. 昆明医科大学学报 2013(02)
    • [13].人VEGF165和小鼠VEGF164共同抗原表位分析及验证[J]. 中国生物制品学杂志 2012(08)
    • [14].经VEGF165转染的成纤维细胞-脱细胞异种真皮替代物的构建与临床应用[J]. 临床和实验医学杂志 2011(19)
    • [15].经VEGF165转染的成纤维细胞-脱细胞异种真皮替代物的构建及其对创面愈合作用的实验研究[J]. 感染、炎症、修复 2011(03)
    • [16].MR靶向对比剂前体——VEGF165-适配体与VEGF165体外结合实验研究[J]. 国际医学放射学杂志 2011(01)
    • [17].慢病毒介导BMP2和VEGF165基因共转染对骨髓基质干细胞成骨分化的影响[J]. 上海交通大学学报(医学版) 2011(06)
    • [18].VEGF165基因修饰脂肪干细胞对糖尿病大鼠骨缺损的修复研究[J]. 中国骨伤 2017(06)
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    • [20].噬菌体抗体库技术筛选抗VEGF165单克隆抗体[J]. 生物技术通讯 2019(03)
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    • [23].VEGF165真核表达载体的构建与体外表达[J]. 口腔颌面外科杂志 2009(01)
    • [24].重组VEGF_(165)基因表达与活性检测[J]. 山东医药 2008(08)
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