LTA与LPS对血管内皮细胞的协同效应及其机制的研究

LTA与LPS对血管内皮细胞的协同效应及其机制的研究

论文摘要

目的:通过培养人脐静脉内皮细胞(HUVEC)系,观察革兰氏阴性菌致病物质脂多糖(LPS)预处理后,对革兰氏阳性菌致病物质脂磷壁酸(LTA)刺激后血管内皮细胞(VEC)活化能力和损伤的影响,明确LPS是否对LTA引起的VEC活化及损伤具有增敏效应;若有增敏效应,其增敏效应是否通过胞膜TLR4介导的使TLR2上调所实现,借此研究肠源性细菌易位的革兰氏阳性菌感染的危重症患者其两类菌群之间是否具有协同效应并对其效应的机制进行初步探讨。方法:本实验共分为两个部分。第一部分以HUVEC系ECV304进行复苏和培养。首先以小剂量LPS孵育ECV3046h、8h、10h、12h、24h,用免疫细胞化学方法观察胞膜TLR2表达变化,选出TLR2表达量最多的“最佳刺激时间”。以前期实验结果为依据,分为三个处理组:对照组、内毒素组、TLR4抗体组,分别以空白培养液、小剂量LPS、LPS和TLR4抗体刺激细胞,采用MTT法检测三组细胞增殖活性变化;同时用实时定量PCR方法观察细胞内TLR2和TLR4mRNA的表达情况。第二部分以小剂量LPS或LPS+TLR4抗体对ECV304进行预处理后再用LTA刺激细胞,收集细胞上清液,应用酶联免疫方法(ELISA)检测上清液中白细胞介素-8(IL-8)、血管性血友病因子(vWF)的含量,借此观察小剂量LPS对VEC活化和损伤的影响以及TLR4在其中发挥的作用。结果:第一部分实验中未刺激的ECV304单层生长,呈鹅卵石状镶嵌排列,边界清楚;小剂量LPS刺激可引起细胞长宽比例增大,细胞梭形化,排列紊乱,边界不清,LPS持续刺激12h后细胞上述表现加重并逐渐出现个别细胞死亡,尤其刺激24h可发现有核碎裂、死亡、飘起的现象;用免疫细胞化学方法检测结果显示小剂量LPS可以上调ECV304细胞膜TLR2的表达,“最佳刺激时间”为8h;MTT法检测结果显示LPS刺激组和TLR4抗体组孵育8h对细胞的增殖活性无明显影响;实时定量PCR检测胞膜TLR2、TLR4mRNA表达结果显示:LPS刺激组孵育4h TLR2mRNA表达未见明显变化,8h时TLR2mRNA表达上调,TLR4抗体组8h TLR2mRNA表达水平仍明显升高,但与LPS刺激组比较TLR2mRNA表达无明显差异;LPS刺激组孵育4h、8h均可上调TLR4mRNA表达,TLR4抗体组TLR4mRNA表达也有明显升高,但与LPS刺激组比较孵育8h后TLR4mRNA表达较低。第二部分实验结果显示:LPS或LTA刺激ECV304,细胞培养上清液中vWF及IL-8的水平均有一定程度的升高;经小剂量LPS预处理8h后,再用LTA孵育细胞24h,上清液中vWF及IL-8的水平较LPS或LTA单一刺激有显著升高,加入抗体封闭胞膜TLR4未对vWF及IL-8的分泌水平产生影响。结论:小剂量LPS对LTA引起的VEC活化及损伤具有协同效应;其协同效应与TLR2上调有关,而TLR2的上调尚不能除外是由TLR4参与介导的;本研究发现TLR4抗体对LPS与LTA的协同效应无明显拮抗作用,其具体机制有待于进一步探讨。

论文目录

  • 中文摘要
  • Abstract
  • 縮略语/符号说明
  • 前言
  • 研究现状、成果
  • 研究目的、方法
  • 一、小剂量LPS对血管内皮细胞TLR2、TLR4表达的影响
  • 1.1 对象和方法
  • 1.1.1 实验材料
  • 1.1.2 实验方法
  • 1.2 结果
  • 1.2.1 小剂量LPS对ECV304细胞生长形态的的影响
  • 1.2.2 免疫细胞化学检测小剂量LPS对ECV304 TLR2表达的影响
  • 1.2.3 MTT法检测小剂量LPS对ECV304细胞增殖活性的影响
  • 1.2.4 实时定量PCR检测小剂量LPS对ECV304 TLR2、TLR4mRNA表达的影响
  • 1.3 讨论
  • 1.3.1 小剂量LPS致ECV304细胞形态学改变的影响
  • 1.3.2 免疫细胞化学方法检测LPS刺激ECV304胞膜表面TLR2的变化
  • 1.3.3 小剂量LPS对ECV304细胞增殖活性的影响
  • 1.3.4 实时定量PCR检测LPS刺激ECV304细胞TLR2、TLR4 mRNA的变化
  • 1.4 小结
  • 二、LPS协同LTA对血管内皮细胞活化和损伤的影响
  • 2.1 对象和方法
  • 2.1.1 实验材料
  • 2.1.2 实验方法
  • 2.2 结果
  • 2.2.1 LPS预处理后LTA孵育对ECV304产生IL-8的影响
  • 2.2.2 LPS预处理后LTA孵育对ECV304产生vWF的影响
  • 2.3 讨论
  • 2.3.1 LPS对ECV304的作用
  • 2.3.2 LPS与LTA对ECV304的协同作用
  • 2.3.3 TLR4作用的初步探讨
  • 2.4 小结
  • 结论
  • 参考文献
  • 发表论文和参加科研情况说明
  • 综述
  • 综述参考文献
  • 致谢
  • 相关论文文献

    • [1].羊种布鲁菌16M LPS单克隆抗体制备与鉴定[J]. 中国人兽共患病学报 2019(12)
    • [2].柴胡多糖对LPS诱导心肌细胞损伤的机制研究[J]. 中国免疫学杂志 2020(01)
    • [3].LPS对人牙周膜成纤维细胞中骨唾液蛋白和白细胞介素-8表达的影响的研究[J]. 湖南师范大学学报(医学版) 2020(01)
    • [4].基于景观绩效系列(LPS)的大理市双鸳游园可持续景观设计[J]. 绿色科技 2020(03)
    • [5].益母草碱对LPS诱导小鼠腹腔巨噬细胞炎症反应的调控作用[J]. 免疫学杂志 2020(11)
    • [6].LPS诱导慢性帕金森病小鼠模型的建立与评价[J]. 解剖学研究 2016(05)
    • [7].右美托咪定对LPS诱导星形胶质细胞MCP-1分泌的影响[J]. 安徽医科大学学报 2017(01)
    • [8].芹菜素对LPS诱导小鼠急性肺损伤的保护作用[J]. 安徽农业科学 2015(35)
    • [9].利用流式细胞术检测LPS刺激活化后小鼠腹腔巨噬细胞体积的变化[J]. 基础医学与临床 2014(06)
    • [10].金银花提取物对LPS致ARDS大鼠肺炎症影响的研究[J]. 广东药科大学学报 2017(03)
    • [11].LPS诱导的炎症反应对脑动脉瘤形成和破裂引起出血的影响[J]. 医学理论与实践 2017(16)
    • [12].白藜芦醇对LPS诱导HUVEC细胞线粒体跨膜电位影响研究[J]. 四川生理科学杂志 2016(01)
    • [13].厚朴酚改善LPS诱导的小鼠抑郁行为和大脑细胞因子的研究[J]. 中医药通报 2016(02)
    • [14].羧甲基壳聚糖对LPS干预人牙周膜成纤维细胞表达PGE2的影响[J]. 临床口腔医学杂志 2015(05)
    • [15].金丝桃苷对内毒素(LPS)诱导的小鼠急性肾损伤的保护作用[J]. 沈阳药科大学学报 2014(10)
    • [16].羧甲基壳聚糖对LPS干预人牙周膜成纤维细胞表达IL-6的影响[J]. 临床口腔医学杂志 2013(11)
    • [17].蒲公英提取物对LPS激活小鼠腹腔巨噬细胞炎症因子分泌的影响[J]. 动物医学进展 2011(02)
    • [18].枯芩与子芩醇提物对LPS诱导的急性肺损伤保护作用比较研究[J]. 中成药 2020(10)
    • [19].甘麦大枣汤通过调控炎症改善LPS诱导的小鼠急性抑郁样行为[J]. 中药药理与临床 2019(05)
    • [20].腹腔注射LPS建立认知功能障碍相关的中枢神经系统免疫炎症小鼠模型[J]. 中国病理生理杂志 2017(05)
    • [21].清开灵对LPS诱导仔猪发热相关调节因子动态变化的影响[J]. 中国兽医学报 2017(07)
    • [22].小窝蛋白1脚手架区多肽减轻LPS诱导的小鼠急性肺损伤[J]. 中国病理生理杂志 2017(08)
    • [23].右美托咪定对LPS诱导急性肺损伤的保护作用[J]. 河南医学高等专科学校学报 2016(02)
    • [24].姬松茸多糖对LPS诱导人脐静脉血管内皮细胞损伤的保护机制[J]. 温州医科大学学报 2020(11)
    • [25].茶多糖对LPS活化单核巨噬细胞内活性氧的影响[J]. 中国兽医杂志 2014(03)
    • [26].银翘散对LPS致急性肺损伤小鼠的保护作用[J]. 四川中医 2014(05)
    • [27].血栓通注射液对LPS诱导的兔弥散性血管内凝血的拮抗作用[J]. 中国病理生理杂志 2013(04)
    • [28].LPS介导的树突状细胞成熟过程中的表型变化[J]. 中国免疫学杂志 2012(02)
    • [29].清开灵注射液对LPS诱导的兔弥散性血管内凝血的作用[J]. 中国病理生理杂志 2012(05)
    • [30].防己黄芪汤对LPS作用下大鼠肝星状细胞增殖的影响[J]. 浙江中西医结合杂志 2010(07)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  ;  

    LTA与LPS对血管内皮细胞的协同效应及其机制的研究
    下载Doc文档

    猜你喜欢