LXRs激动对PPARγ转录调节脂肪因子表达的作用及机制研究

LXRs激动对PPARγ转录调节脂肪因子表达的作用及机制研究

论文摘要

脂肪组织能分泌多种蛋白质激素和细胞因子(统称脂肪因子,Adipokines)。肥胖时脂肪组织分泌的脂肪因子谱发生变化,如脂联素(Adiponectin)分泌减少,内脂素(Visfatin)、瘦素(Leptin)、抵抗素(Resistin)分泌增加,并伴随着脂肪炎症因子如肿瘤坏死因子-α(Tumor necrosis factor alpha, TNF-α)、白介素-6(Interleukin-6, IL-6)等分泌增加,最终的结果是导致胰岛素抵抗(Insulin Resistance, IR),增加了代谢综合征(Metabolic Syndrome, MS)、2型糖尿病和心血管疾病的发病风险。以脂肪因子为切入点研究肥胖和MS的关系已成为当前的研究热点。过氧化物酶增殖物活化受体γ(Peroxisome proliferator activated receptor gamma, PPAR、)选择性地在脂肪组织中高表达,因其对胰岛素敏感性的调节而备受瞩目。众多的脂肪因子如Adiponectin、Visfatin、TNF-α和IL-6等的表达均受到PPARγ转录调节,激活PPARγ增加胰岛素敏感性的机制主要与其调节脂肪因子的产生有关。肝X受体(Liver X receptors, LXRs)也在脂肪组织高表达,其在调节糖、脂代谢方面的作用与PPARγ存在重叠,但其对脂肪因子表达的作用未见报道。在肝细胞中发现,LXRs激动能够抑制PPARα信号通路进而抑制脂肪酸分解代谢相关基因的表达。但在脂肪细胞中,LXRs激动是否影响PPARγ转录调节脂肪因子的表达尚无研究。基于脂肪因子与IR的密切关系以及PPARγ在调节脂肪因子表达中的重要地位,研究LXRs激动对PPARγ转录调节脂肪因子表达的作用及机制,对于评价LXRs对机体胰岛素敏感性的作用以及LXRs激动剂作为拮抗MS新型药物的前景具有重要意义。第一部分LXRs激动对PPARγ转录调节脂肪因子表达的作用目的:观察LXRs激动及LXRα表达敲低对PPARγ转录调节脂肪因子表达的作用。方法:将3T3-L1前脂肪细胞经标准"Cocktail"诱导分化为成熟脂肪细胞。首先利用Real-time RT-PCR和Western blot方法观察了脂肪细胞分化过程中LXRs和PPARγ的表达变化;其次在成熟脂肪细胞中利用Real-time RT-PCR、Western blot和ELISA法观察了PPARγ激动剂Pioglitazone 3μM存在或不存在时,LXRs激动剂T0901317以0、0.1、1.0和10.0μM浓度梯度刺激脂肪细胞对PPARγ转录调节脂肪因子Adiponectin、Visfatin以及LPS 2μg/ml刺激诱导的脂肪炎症因子TNF-α和IL-6表达和分泌的作用,并观察了以逆转录病毒介导的shRNA-LXRα转染特异性敲低LXRα表达后上述脂肪因子表达的变化;最后以Real-time RT-PCR和Western blot方法研究了LXRs激动对PPARγ基因本身表达的作用。结果:(1)在脂肪细胞分化成熟过程中,PPARγ和LXRa mRNA和蛋白表达水平逐渐增加,在诱导第4日(DAY 4),二者的表达较诱导前有显著增加(P<0.05 VS DAY 0)至诱导第8-10日达到高峰,而LXRβ表达水平在诱导分化过程中无明显变化;(2)T0901317浓度依赖性地抑制Adiponectin和Visfatin mRNA和蛋白表达,并浓度依赖性地拮抗了Pioglitazone诱导的Adiponectin和Visfatin mRNA和蛋白表达增加,在1.0及10.0μM作用显著(P<0.05 VS DMSO/Pioglitazone);但在脂肪炎症因子的表达上,T0901317浓度依赖性地下调了LPS刺激诱导的TNF-α和IL-6mRNA表达和蛋白分泌,同时加入Pioglitazone,TNF-α和IL-6mRNA表达和蛋白分泌在T0901317各浓度点均进一步下降,在T0901317在1.0及10.0μM浓度与Pioglitazone的协同抑制作用最显著(P<0.05 VS LPS/LPS+Pioglitazone);(3)LXRα表达敲低后,在T0901317各浓度点,Pioglitazone诱导的Adiponectin和Visfatin mRNA和蛋白表达进一步上调(P<0.05 VS shRNA-Control+Pioglitazone组),但尽管存在Pioglitazone, LPS刺激诱导的TNF-α和IL-6的mRNA表达和蛋白分泌在T0901317各浓度点均增加(P<0.05 VS shRNA-Control+Pioglitazone+LPS组);(4)T0901317在1.0和10.0μM能上调PPARy mRNA和蛋白表达水平(P<0.05 VSDMSO).结论:在成熟脂肪细胞中,LXRs激动能拮抗PPARγ转录激活脂肪因子Adiponectin和Visfatin表达,但协同PPARγ对脂肪炎症因子TNF-α和IL-6表达的转录抑制作用,前者可能对胰岛素敏感性不利,而后者则可能改善胰岛素敏感性。对LXRs激动剂来说,如何趋利避害是亟待解决的问题,而这需要我们对LXRs激动如何影响PPARγ转录调节脂肪因子表达的机制作深入研究。第二部分LXRs激动影响PPARy转录调节脂肪因子表达的机制研究目的:明确LXRs激动拮抗PPARγ转录激活活性,但协同PPARy抑制炎症介质产生的主要机制。方法:利用启动子报告基因PPRE-Luc和KB-Luc活性分别代表PPARγ转录激活活性和NF-KB的转录活性。利用质粒共转染技术和凝胶迁移滞后试验(Electrophoretic Mobility Shift Assay, EMS A),观察HEK293细胞中LXRα、PPARγ. PPRE-LucKB-Luc质粒共转染及T0901317浓度梯度刺激对PPRE-Luc和KB-Luc活性的影响以及脂肪细胞中LXRs激动或LXRα表达敲低对PPARγ和NF-KB的DNA结合活性的作用;并予RXRα(维甲酸X受体α)表达质粒转染,观察补充RXRα是否能逆转LXRs激动对PPARγ转录激活活性以及PPARγ转录激活脂肪因子表达的拮抗作用;并在脂肪细胞中以Western blot法观察LXRs激动或LXRα表达敲低对LPS刺激的NF-KB信号通路活性的作用。结果:(1)在HEK293细胞中,T0901317浓度依赖性地拮抗了PPARy及其激动剂Pioglitazone诱导的PPRE-Luc活性增加(P<0.05 VS DMSO/Pioglitazone),但能浓度依赖性地协同Pioglitazone对KB-Luc活性的抑制作用,在1.0和10.0μM作用显著(P<0.05 VS LPS+ Pioglitazone);(2)在脂肪细胞中,T0901317拮抗了Pioglitazone诱导的PPARγ与PPRE结合活性增加,但协同了Pioglitazone对NF-KB的DNA结合活性的抑制作用;LXRα表达敲低后,Pioglitazone诱导的PPARγ与PPRE的结合活性进一步增加,但Pioglitazone和T0901317对NF-KB的DNA结合活性的协同抑制作用降低;(3)补充RXRα能够逆转LXRs激动对PPRE-Luc活性的抑制作用,并基本恢复脂肪细胞中Adiponectin和Visfatin mRNA和蛋白表达(P<0.05 VS pcDNA3.1);(4)在脂肪细胞中,Pioglitazone和T0901317能够单独或协同抑制LPS刺激的IKBα磷酸化和磷酸化NF-κBp65核转位(P<0.05 VS LPS),进而抑制NF-κB通路活性;LXRa表达敲低后,Pioglitazone和T0901317对NF-KB通路活性的协同抑制作用明显降低(P<0.05 VS shRNA-Control).结论:脂肪细胞中LXRs激动主要通过竞争RXRα拮抗PPARγ转录激活活性,进而抑制PPARγ转录激活脂肪因子表达,补充RXRα能基本逆转此种拮抗作用;而LXRs与PPARγ激动能协同抑制成熟脂肪细胞NF-KB信号通路活性,进而协同抑制脂肪炎症因子表达。同时补充RXRα受体或予激动,有可能使LXRs激动剂最大程度发挥胰岛素增敏作用。

论文目录

  • 致谢
  • 中文摘要
  • Abstract
  • 插图清单
  • 缩写、符号清单、术语表
  • 第一部分
  • 1 引言
  • 2 材料和方法
  • 2.1 细胞系
  • 2.2 逆转录病毒介导的RNA干扰载体
  • 2.3 材料及试剂
  • 2.4 主要仪器及设备
  • 2.5 溶液配置
  • 2.5.1 3T3-L1前脂肪细胞诱导所需试剂配置
  • 2.5.2 Western blot所需试剂配置
  • 2.5.3 ELISA所需试剂配置
  • 2.5.4 质粒抽提和转染所需试剂配置
  • 2.5.5 干预药物的配置
  • 2.6 实验方法
  • 2.6.1 3T3-L1前脂肪细胞的培养和诱导分化
  • 2.6.2 油红O染色
  • 2.6.3 荧光嵌合法Real-time RT-PCR
  • 2.6.4 蛋白免疫印迹法(Western blot)
  • 2.6.5 双抗体夹心酶联免疫吸附法(ELISA)
  • 2.6.6 质粒的扩增、抽提与定量
  • 2.6.7 逆转录病毒的制备和感染成熟脂肪细胞
  • 2.6.8 实验分组
  • 2.6.9 统计分析
  • 3 结果
  • 3.1 3T3-L1诱导分化成熟过程中LXRs和PPARγ的表达
  • 3.2 LXRs激动对脂肪因子Adiponectin和Visfatin表达的作用
  • 3.3 LXRs激动对脂肪炎症因子TNF-α和IL-6表达的作用
  • 3.4 逆转录病毒介导的shRNA-LXRα质粒转染敲低脂肪细胞LXRα蛋白表达
  • 3.5 特异性LXRα表达敲低对脂肪因子Adiponectin和Visfatin表达的作用
  • 3.6 特异性LXRα表达敲低对脂肪炎症因子TNF-α和IL-6表达的作用
  • 3.7 LXRs激动或特异性LXRα表达敲低对PPARγ表达的作用
  • 4 讨论
  • 第二部分
  • 1 引言
  • 2 材料和方法
  • 2.1 细胞系
  • 2.2 质粒和逆转录病毒RNA干扰载体
  • 2.3 材料和试剂
  • 2.4 主要仪器及设备
  • 2.5 溶液配置
  • 2.5.1 EMSA所需试剂配置
  • 2.5.2 质粒抽提所需试剂配置
  • 2.5.3 Western blot及干预药物配置均同第一部分
  • 2.6 实验方法
  • 2.6.1 质粒扩增及分离纯化
  • 2.6.2 质粒的共转染和转染
  • 2.6.3 启动子活性的检测
  • 2.6.4 凝胶迁移滞后试验(EMSA)
  • 2.6.5 荧光嵌合法Real-time RT-PCR和Western blot方法同第一部分
  • 2.6.6 实验分组
  • 2.6.7 统计分析
  • 3 结果
  • 3.1 LXRs激动拮抗PPARγ转录激活活性
  • 3.2 LXRs激动通过竞争RXRα受体拮抗PPARγ转录激活作用
  • 3.3 RXRα补充逆转了LXRs激动对Adiponetcin和Visfatin表达的抑制
  • 3.4 LXRs激动协同PPARγ抑制NF-κB的转录活性
  • 3.5 LXRs与PPARγ激动协同抑制脂肪细胞NF-κB信号通路活性
  • 4 讨论
  • 5 结论
  • 参考文献
  • 综述
  • References
  • 作者简历及在学期间所取得的科研成果
  • 相关论文文献

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