山羊痘病毒基因缺失转移载体及基因缺失突变毒株的构建

山羊痘病毒基因缺失转移载体及基因缺失突变毒株的构建

论文题目: 山羊痘病毒基因缺失转移载体及基因缺失突变毒株的构建

论文类型: 博士论文

论文专业: 预防兽医学

作者: 郭巍

导师: 相文华,薛飞

关键词: 羊痘病毒,山羊痘,基因,基因,基因缺失,突变株

文献来源: 东北农业大学

发表年度: 2005

论文摘要: 山羊痘和绵羊痘病(Goat and sheep pox disease)是由羊痘病毒(Capripoxvirus, CPV)感染山羊和绵羊等偶蹄动物引起的一种烈性传染病,病畜以发热、全身性起痘为典型特征。我国目前多使用山羊痘鸡胚化弱毒疫苗预防羊痘病,对羊痘病毒很少有分子病毒学方面的研究。 本实验的目的是以我国广泛使用的山羊痘弱毒疫苗株(GTPV-TY)为模板,通过基因重组等方法构建新型山羊痘病毒基因缺失疫苗。主要进行了以下工作:(1)根据GENBANK公布的羊痘病毒基因组序列设计引物,利用PCR克隆GTPV-TY株TK基因和P32基因;(2)以TK基因或P32基因为目的基因,构建基因缺失转移载体用于同源重组;(3)将LacZ基因表达盒插入TK基因缺失转移载体,筛选TK基因缺失的GTPV-TY突变株。 胸苷激酶基因(TK)是痘病毒的毒力基因之一,而且是病毒生长和复制非必需的基因。试验中首先用PCR方法克隆了GTPV-TY的TK基因,TK基因ORF大小为534bp,编码178个氨基酸,TK的N端具有ATP结合结构域,与其它毒株的TK基因的核苷酸序列比较显示CPV各毒株TK基因的同源性大于96%,保守性很高。为了构建TK基因缺失转移载体,设计了两对引物PRETK1/PRETK2和BACTK1/ACTK2分别扩增得到长度约1kb的TK基因同源重组前臂和同源重组后臂,分别插入到pGEM-T easy载体;通过双酶切的方法鉴定序列的插入方向后,将两段重组臂按照它们在基因组中的排列顺序重新连接起来,构建成pdTK转移载体。pdTK载体人为去除了TK基因ORF内部337bp的核苷酸序列,并且改变了N端ATP结合结构域的氨基酸组成,完全消除了突变株表达TK活性的可能,而且缺失部分不会影响与TK基因相邻的基因结构。两条同源重组臂的连接位置引入了SmaI酶切位点,可以作为外源基因的插入位点。 P32基因是痘苗病毒(VV)H3L基因的同源物,是病毒的囊膜蛋白,根据GENBANK公布的羊痘病毒基因组序列设计引物,用PCR方法克隆了GTPV-TY的P32基因,P32基因ORF大小为969bp,编码323个氨基酸,与其它CPV毒株P32基因的同源性在97%以上,是高度保守的基因。参照构建pdTK转移载体的方法,构建了pdP32转移载体,人为除去了P32基因包括起始密码子在内的525bp的核苷酸序列,完全消除了突变株表达P32蛋白的可能,而且缺失部分不会影响与P32基因相邻的基因结构。同源重组臂之间也带有SmaI酶切位点,以便插入外源基因。 重组病毒的筛选标记为自行构建的LacZ基因表达盒,其中LacZ片段通过限制性内切酶酶切从质粒pcDNA 3.1/His/LacZ中获得,Pcmv启动子序列通过PCR方法从质粒pcDNA 5_TO中获得;插入pGEM-T easy载体,构建成LacZ基因表达盒pCMV-LacZ,从中切下CMV-LacZ片段插入pdTK,构建成pdTK/LacZ质粒。将pdTK/LacZ利用脂质体方法转染已经感染GTPV-TY毒的羊胎皮肤细胞,当大部分细胞出现病变时,收获病毒,再用X-gal筛选蓝色蚀斑连续纯化4代,得到重组病毒TK~-/LacZ~+GTPV-TY突变株,重组病毒经电子显微镜检验,形态与正常病毒相同,提取重组病毒DNA并使用LacZ基因特异引物Id1/Id2进行PCR扩增,可以得到0.4kb的特异片段,证明重组病毒构建成功。

论文目录:

摘要

英文摘要

1 引言

1.1 CPV的研究概况

1.1.1 羊痘病的发病概况

1.1.2 CPV的基本特征

1.1.3 CPV的基因组结构

1.1.4 CPV各毒株之间的关系

1.1.5 CPV的诊断方法

1.2 与 CPV毒力相关的蛋白及其功能

1.2.1 核苷酸还原酶

1.2.2 胸腺嘧啶核苷激酶

1.2.3 囊膜蛋白

1.3 CPV疫苗的研究概况

1.3.1 CPV传统疫苗

1.3.2 亚单位疫苗

1.3.3 新型CPV基因缺失疫苗

1.4 基因缺失CPV重组病毒的构建及筛选策略

1.4.1 构建重组 CPV的基本原理

1.4.2 转移载体的基本元件

1.5 研究的目的和意义

2 材料和方法

2.1 材料

2.1.1 病毒与细胞

2.1.2 质粒与菌种

2.1.3 基因组信息来源

2.1.4 引物

2.1.5 细胞培养基的制备

2.1.6 试剂

2.1.7 主要仪器

2.2 实验方法

2.2.1 羊胎皮肤细胞的制备

2.2.2 GTPV-TY株的培养与病毒 DNA的提取

2.2.3 TK基因的克隆和序列测定

2.2.4 P32基因的克隆和序列测定

2.2.5 LacZ基因转移载体pCMV-LacZ的构建

2.2.6 带有LacZ基因的GTPV TK基因缺失载体的构建

2.2.7 带有LacZ基因的GTPV P32基因缺失载体的构建

2.2.8 表达LacZ基因的TK~-GTPV-TY毒株的筛选和鉴定

3 结果

3.1 GTPV-TY株的培养

3.2 GTPV-TY株TK基因的序列测定分析

3.2.1 GTPV-TY株TK基因的克隆

3.2.2 GTPV-TY株TK基因序列测定

3.2.3 TK基因同源性比较

3.3 GTPV-TY株P32基因的序列测定分析

3.3.1 GTPV-TY株P32基因的克隆

3.3.2 GTPV-TY株P32基因序列测定

3.3.3 P32基因同源性比较

3.4 LacZ基因转移载体的构建

3.4.1 Pcmv序列的克隆

3.4.2 重组载体pCMV-LacZ的构建

3.5 带有LacZ基因的GTPV TK基因缺失载体的构建

3.5.1 重组臂的克隆

3.5.2 TK基因缺失载体pdTK的构建

3.5.3 表达LacZ基因的重组载体的构建

3.6 带有LacZ基因的GTPV P32基因缺失载体的构建

3.6.1 重组臂的克隆

3.6.2 P32基因缺失载体pdP32的构建

3.6.3 表达LacZ基因的重组载体的构建

3.7 表达LacZ基因的GTPV TK~-毒株的筛选和鉴定

3.7.1 病毒的筛选和纯化

3.7.2 重组病毒的PCR鉴定

4 讨论

4.1 GTPV-TY株的培养

4.2 GTPV-TY株的TK基因

4.3 TK基因缺失转移载体的构建

4.4 GTPV-TY株的P32基因

4.5 P32基因缺失转移载体的构建

4.6 TK基因缺失GTPV-TY重组病毒的构建和筛选

5 结论

致谢

参考文献

附录

附录A 本文使用的缩写

附录B 本实验获得的GTPV-TY株TK基因序列

附录C GTPV-TY TK基因同其它痘病毒TK基因的核苷酸序列比较

附录D GTPV-TY TK基因同其它痘病毒TK基因的氨基酸序列比较

附录E 本实验获得的GTPV-TY株P32基因序列

附录F GTPV-TY P32基因与其它痘病毒H3L基因的核苷酸序列比较

附录G GTPV-TY P32基因与其它痘病毒H3L基因的氨基酸序列比较

附录H pCMV测序结果

攻读学位期间发表的学术论文

发布时间: 2005-10-31

参考文献

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