丁香假单胞菌MB03冰核蛋白基因低温依赖型启动子转录活性的研究

丁香假单胞菌MB03冰核蛋白基因低温依赖型启动子转录活性的研究

论文摘要

丁香假单胞菌(Pseudomonas syringae)是多种植物中常见的一种病原细菌,可引发宿主植物发生超敏反应(Hypersensitive response)或发生冻害病变,其中导致植物组织和细胞内的水分形成冰晶的致病分子——冰核蛋白(Ice nucleation protein, INP),就是该菌在受到信号分子激发后所合成的一种诱导表达型分泌蛋白。因此,研究该蛋白基因的转录活性与调控因子,对于深入理解丁香假单胞菌冰核活性的发生与致病机制,以及发掘相应的植病生防机制将具有重要意义。丁香假单胞菌MB03是一株具有高冰核活性的菌株,其冰核基因inaQ已通过原位杂交的方法克隆(GenBank登录号:EU360731)。本研究以该冰核基因的启动子作为研究对象,以绿色荧光蛋白(Green fluorescence protein, GFP)为报告蛋白,研究了在不同培养基、不同培养温度和不同外源化学诱导物作用下,该启动子分别在丁香假单胞菌、大肠杆菌(Escherichia coli)和恶臭假单胞菌(P. putida AB92019)中的转录与表达活性,从而确定了该启动子为一种低温依赖型启动子,且启动活性受3,5-二硝基水杨酸等外源诱导物显著性调控。冰核基因inaQ包含上游522 bp序列和完整的编码1200 aa的结构基因。通过生物信息学方法分析发现,inaQ启动子序列与3个已报道的冰核基因启动子有较高的相似性。对其启动子的特征区域进行预测,得到了与大肠杆菌启动子的-35区和-10区类似的保守序列,分别为TTGCTG (B box)和GGTTAAATT (Abox)。利用RT-qPCR对冰核基因inaQ转录活性进行相对定量分析,通过分别在16℃和28℃培养条件下其生长阶段的基因转录活性水平的比较,结果显示该启动子在16℃培养下冰核基因的转录水平明显高于丁香假单胞菌的正常培养温度28℃下的水平,在对数生长中后期前者是后者的将近两倍,而到稳定期中期则达到接近6倍,并且在16℃下有利于冰核基因的持续转录表达。利用SOE-PCR的方法将冰核基因上游522 bp启动子序列和绿色荧光蛋白(GFP)融合片段,插入到载体质粒pUCP18的PstⅠ/EcoR I位点,获得了重组载体PInaQ522GFP,用于在大肠杆菌和恶臭假单胞菌中分析inaQ启动子活性。通过显微镜观察和SDS-PAGE的检验,在大肠杆菌和恶臭假单胞菌中均可以表达GFP蛋白,并使细胞产生可见荧光,证明全长的启动子具有启动活性。通过删除全长启动子不同预测的活性区,得到2个长度分别为297 bp和111 bp的截短的启动子片段,并分别构建得到表达GFP的重组质粒,经过荧光活性检测,发现全长的启动子的重组菌和297bp截短启动子的重组菌的荧光强度分别为356.7和352.5,而含有111bp的截短启动子则未检测到荧光,证明启动子的2个活性区(A box和B box)直接决定了是否转录作用,而其远端序列长度则对对启动子活性影响不大。选择了1种在大肠杆菌和假单胞菌等革兰氏阴性菌中广泛存在的oprL基因的启动子为对照,比较了两者在常规培养条件下的启动活性,在大肠杆菌中含有冰核基因启动子的重组菌最大荧光强度为456.7,平均荧光强度值为330.1而含有oprL基因启动子的荧光强度分别为323.7和188.9,说明在大肠杆菌中冰核基因启动子明显优于oprL基因启动子,而在恶臭假单胞菌中,两者有相近活性分别为平均荧光强度分别为99.2和130.9,oprL启动子略优。选择不同的培养基,不同的温度和不同的外源化学诱导物对启动子进行诱导,探究该冰核基因启动子的表达条件。在培养基选择方面,采用KB培养基和NAD培养基培养时,比相同条件下LB培养荧光强度提高了32.5%和27.3%。在温度方面,16℃培养时,大肠杆菌和恶臭假单胞菌稳定期中期的荧光强度分别较28℃提高17.9%和30.1%,说明在相对较低温度下,该基因有相对较高的表达活性,起到了上调作用。在诱导物方面,不同诱导物对该启动子的活性具有上调和下调作用,其中具有上调作用的分别是硫酸钠、硝酸钠、3,5-二硝基水杨酸、对苯二酚、4-羟基-3硝基苯乙酸,其中3,5-二硝基水杨酸具有最大上调活性。研究亦证实芥菜籽的热水抽提物和4-羟基-3硝基苯乙酸具有类似的诱导活性,通过高效液相分析诱导物的化学组成,初步证实了4-羟基-3硝基苯乙酸是芥菜籽热水抽提物中的活性成分而诱导了该启动子的转录活性。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 缩略语表
  • 1 前言
  • 1.1 启动子概述
  • 1.1.1 启动子结构
  • 1.1.1.1 原核生物启动子
  • 1.1.1.2 真核生物启动子
  • 1.2 启动子分类
  • 1.2.1 组成型启动子
  • 1.2.2 诱导型启动子
  • 1.3 启动子的研究手段
  • 1.3.1 软件预测启动子
  • 1.3.2 利用算法识别原核生物启动子
  • 1.3.3 启动子捕获方法分离和鉴别启动子
  • 1.3.3.1 基因组文库筛选
  • 1.3.3.2 利用启动子探针质粒载体筛选启动子
  • 1.3.3.3 常规PCR法
  • 1.3.3.4 反向PCR
  • 1.3.3.5 锅柄PCR
  • 1.3.3.6 热不对称PCR法
  • 1.3.3.7 Y型接头扩增法
  • 1.4 冰核活性细菌(INA细菌)
  • 1.4.1 冰核活性细菌简介
  • 1.4.2 已报道冰核细菌分布
  • 1.4.3 冰核活性基因在假单胞菌中的分布
  • 1.4.4 我国冰核细菌的研究概况
  • 1.4.5 存在问题
  • 1.5 低温酶
  • 1.5.1 低温脂肪酶
  • 1.5.2 低温蛋白酶
  • 1.5.3 低温纤维素酶
  • 1.6 研究的目的和意义
  • 2 材料与方法
  • 2.1 实验材料
  • 2.1.1 菌株和质粒
  • 2.1.2 培养基
  • 2.1.3 实验所需试剂
  • 2.1.3.1 质粒、总DNA提取,质粒转化,质粒快检所需试剂
  • 2.1.3.2 大肠杆菌和假单胞菌感受态制备所需试剂
  • 2.1.3.3 SDS-PAGE所需试剂
  • 2.1.3.4 Western Blot所需试剂
  • 2.1.3.5 GFP荧光强度所需试剂
  • 2.1.3.6 琼脂糖凝胶电泳所需试剂
  • 2.1.3.7 高效液相所用试剂
  • 2.1.4 实验所用仪器
  • 2.2 实验方法
  • 2.2.1 大肠杆菌和假单胞菌基因组的提取
  • 2.2.2 大肠杆菌和假单胞菌质粒的提取
  • 2.2.3 DNA体外重组
  • 2.2.4 恶臭假单胞菌的电转化法
  • 2.2.5 大肠杆菌转化子和恶臭假单胞菌转化子的筛选鉴定
  • 2.2.6 绿色荧光蛋白(GFP)荧光活性的测定
  • 2.2.7 SDS-PAGE样品制备和电泳
  • 2.2.8 Western Blot实验
  • 2.2.9 芥菜籽沸水抽提物的制备
  • 2.2.10 高效液相色谱样品的制备及运行条件
  • 2.2.11 RNA的提取
  • 2.2.12 PCR扩增
  • 3 结果与分析
  • 3.1 冰晶核蛋白基因启动子的序列分析
  • 3.1.1 冰晶核蛋白基因启动子的序列比对
  • 3.1.2 冰核基因启动子结构预测
  • 3.2 启动子活性分析
  • 3.2.1 RT-qPCR确定冰核基因的相对表达量
  • 3.2.2 启动子序列的克隆
  • 3.2.3 重组菌的启动活性验证
  • 3.2.3.1 转化丁香假单胞菌
  • 3.2.3.2 转化大肠杆菌验证活性
  • 3.2.3.3 转化恶臭假单胞菌验证活性
  • 3.2.4 比较P522和poprL的启动活性
  • 3.2.5 比较不同长度启动子在大肠杆菌中的启动活性
  • 3.3 冰核基因启动子的表达条件
  • 3.3.1 培养基对启动子性能的影响
  • 3.3.2 温度对启动子性能的影响
  • 3.3.2.1 恒温培养
  • 3.3.2.2 变温培养
  • 3.3.3 化学诱导物对启动子性能的影响
  • 4. 小结与讨论
  • 4.1 讨论
  • 4.1.1 启动子性能分析
  • 4.1.2 启动子表达条件初探
  • 4.1.3 启动子展望
  • 4.2 小结
  • 参考文献
  • 致谢
  • 相关论文文献

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